2 PrioCHECK™ FMDV NS Ab Strip Kit Instrucciones de Uso
Aditivo
Equilibre el vial con aditivo liofilizado (Componente 4) a 22±3°C y
reconstituya el vial con 2.5 mL el agua desmineralizada (Componente 5)
que se suministra con el kit. El aditivo reconstituido puede mantenerse a
−20°C hasta su fecha de vencimiento.
La reconstitución de aditivo liofilizado debe hacerse del siguiente modo:
1. Equilibre el vial a 22±3°C.
2. Con el vial en posición vertical, dé suavemente unos golpecitos contra
la mesa para asegurarse de que el contenido esté en el fondo del vial.
3. Abra con cuidado el vial.
4. Agregue la cantidad específica de agua desmineralizada (Componente 5).
5. Cambie el tapón del vial y deje que el material liofilizado se disuelva.
6. Agite suavemente de modo que el material que siga seco se disuelva.
7. Deje en reposo el material al menos durante 15 minutos a 22±3°C antes
de usar.
8. Invierta con cuidado el vial de modo intermitente (debe evitar la
formación de espuma).
Tampón de ELISA
Agregue aditivo reconstituido al tampón de dilución hasta una
concentración final del 10% (v/v). Prepare 4.0 mL por cada dos tiras
(0.4 mL de aditivo y 3.6 mL de tampón de dilución). Guarde el tampón de
ELISA que no use a 5±3°C hasta 24 horas.
Dilución del conjugado
Prepare nueva la dilución de trabajo del conjugado (Componente 2) en
tampón de ELISA. Prepare 2.1 mL para 2 tiras (2.03 mL de tampón de
ELISA + 70 µL de conjugado 30x).
Nota: La dilución del conjugado debe hacerse inmediatamente antes
de usar.
Solución de lavado
Diluya la solución de lavado (Componente 6) concentrado (200x) en agua
desmineralizada. La cantidad de solución de lavado concentrado es
suficiente para preparar un volumen final de 12 litros. Estabilidad de la
solución de lavado a la dilución de trabajo: 1 semana a 22±3°C.
Nota: Se pueden usar lavadores ELISA comerciales. Si no tiene uno a su
disposición, puede lavar las placas agregando 200 µL de solución de lavado
a todos los pocillos de las placas. Después, vacíe las placas y repita el
proceso las veces necesarias. No es necesario sumergir las placas entre cada
lavado. Tape bien las placas después del último lavado.
Incubación con el suero del ensayo
Realice la incubación de sueros utilizando el protocolo nocturno o de un
único día. Los volúmenes necesario de muestras de prueba y de control
difieren en función del protocolo seleccionado.
Protocolo nocturno para incubación de sueros
1. Agregue 80 µL de tampón de ELISA a todos los pocillos
(Componente 1).
2. Agregue 20 µL de control negativo (Componente 9) a los pocillos A1 y B1.
3. Agregue 20 µL de control negativo diluido (Componente 8) a los
pocillos C1 y D1.
4. Agregue 20 µL de control positivo (Componente 7) a los pocillos E1 y F1.
5. Agregue 20 µL de las muestras del ensayo al resto de pocillos.
6. Cubra la placa de prueba con la tapa adjunta.
7. Agite con suavidad las placas del ensayo.
8. Incube toda la noche (16–18 horas) a 22±3°C.
Protocolo de un único día para incubación de sueros
1. Agregue 80 µL de tampón de ELISA a todos los pocillos (Componente 1).
2. Agregue 50 µL de control negativo (Componente 9) a los pocillos A1 y B1.
3. Agregue 50 µL de control negativo diluido (Componente 8) a los
pocillos C1 y D1.
4. Agregue 50 µL de control positivo (Componente 7) a los pocillos E1 y F1.
5. Agregue 50 µL de las muestras del ensayo al resto de pocillos.
6. Cubra la placa de prueba con la tapa adjunta.
7. Agite con suavidad las placas del ensayo.
8. Incube durante 2 horas a 22±3°C.
Incubación con el conjugado
Nota: Este procedimiento se realiza el segundo día si se utiliza el protocolo
nocturno para incubación de sueros.
1. Vacíe la placa de prueba una vez finalizado el plazo de incubación de
sueros y, a continuación, lave la placa 6 veces con entre 200 µL y 300 µL
de solución de lavado. Seque bien las placas después del último lavado
(invertidas sobre papel absorbente).
2. Agregue 100 µL de dilución de trabajo del conjugado a cada pocillo.
3. Cubra la placa de prueba con la tapa adjunta.
4. Incube 60±5 minutos a 22±3°C.
Incubación con la solución de sustrato cromógeno (TMB)
1. Vacíe las placas del ensayo después del periodo de incubación y lávelas
6 veces con 200–300 µL de solución de lavado por pocillo. Seque bien
las placas después del último lavado.
2. Agregue 100 µL de la solución de sustrato cromógeno (TMB)
(Componente 10) a cada pocillo.
3. Incube 20 minutos a 22±3°C.
4. Agregue 100 µL de la solución de frenado (Componente 11) a cada
pocillo.
5. Mezcle el contenido de los pocillos de las placas del ensayo antes de leer.
Nota: Inicie la adición de solución de frenado 20 minutos después de haber
llenado el primer pocillo con la solución de sustrato cromógeno (TMB).
Agregue la solución de frenado en el mismo orden y al mismo ritmo que la
solución de sustrato cromógeno (TMB).
Lectura del ensayo y cálculo de los resultados
1. Mida la densidad óptica (OD) de los pocillos a 450 nm, preferiblemente
antes de que pasen 15 minutos desde que se pare el desarrollo de color.
2. Calcule la DO450 media de los pocillos A1 y B1 (control negativo
= DO450 máx.).
3. La inhibición porcentual (IP) de los controles y de los sueros del ensayo
se calcula según la siguiente fórmula.
Los valores DO450 de las muestras se expresan como la inhibición porcentual
relativa a la DO450 media máx.
IP = 100 − (DO450 de la muestra / DO450 máx.) × 100
Interpretación de los resultados
Criterios de validación
1. La DO450 media máx. (DO450 del control negativo) debe ser >1.000.
2. La inhibición porcentual media del control positivo diluido debe
ser >50%.
3. La inhibición porcentual media del control positivo debe ser >70%.
El no cumplimiento de estos criterios es motivo suficiente para descartar los
resultados de una placa específica.
Nota: Si la DO450 de una muestra es superior a la DO450 máx., la inhibición
porcentual puede interpretarse como 0%. Si la DO450 media del control
negativo es inferior a 1.000, posiblemente la solución de sustrato
cromógeno (TMB) esté demasiado fría. En ese caso, caliente la solución
hasta que alcance 22±3°C o incube durante 30 minutos. Si la DO450 media
del control negativo es superior a 2.000, se recomienda un periodo de
incubación más corto con la solución de sustrato cromógeno (TMB).
Interpretación de la inhibición porcentual
IP = <50% Negativo
No hay anticuerpos contra la proteína NS del FMDV en la
muestras del ensayo.
IP = ≥50% Positivo
Hay anticuerpos contra la proteína NS del FMDV en la
muestra del ensayo.
Bibliografía
Sørensen KJ, Madsen KG, Madsen ES, Salt JS, Nqindi J, Mackay DKJ (1998)
Differentiation of infection from vaccination in foot-and-mouth disease by
the detection of antibodies to the non-structural proteins 3D, 3AB and
3ABC in ELISA using antigens expressed in baculovirus. Arch Virol
143:1461–1476