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15 octubre 2019
Soluciones que debe tener preparadas
Aditivo del conjugado
Reconstituya el aditivo del conjugado liofilizado (Componente 3) con
1.2 mL de agua desmineralizada (Componente 6). Para un uso parcial del
kit debe dividir el aditivo del conjugado reconstituido en alícuotas de
240 µL (para un máximo de 5 ensayos) y guardarlo a −20°C hasta su uso.
Reactivo de bloqueo
Reconstituya el reactivo de bloqueo liofilizado (Componente 7) con 2 mL
agua desmineralizada (Componente 6). Puede guardarlo a −20°C hasta
su uso.
Para reconstituir los reactivos liofilizados:
1. Equilibre los viales a 22±3°C.
2. Golpee el vial verticalmente (y con cuidado) contra la mesada para
asegurarse que los contenidos se encuentren en el fondo del mismo.
3. Abra el vial.
4. Agregue la cantidad requerida de agua desmineralizada.
5. Reemplace el tapón del vial y rótelo con cuidado para que se disuelva
todo el material.
6. Deje el material liofilizado en reposos 15 minutos a 22±3°C.
7. Invierta el vial de vez en cuando (evite la formación de espuma).
Dilución del conjugado
Agregue 200 µL de aditivo del conjugado reconstituido, 1.8 mL de reactivo
de bloqueo reconstituido y 200 µL de conjugado concentrado (30x)
(Componente 2) a 3.8 mL de tampón de dilución (Componente 5) y mezcle
con cuidado.
Nota: Debe preparar la dilución justo antes de usarla.
Líquido de lavado
El líquido de lavado (Componente 4) debe diluirse (200x) en agua
desmineralizada. Se provee una cantidad suficiente para preparar un
volumen total de 12 litros de solución. Se pueden utilizar lavadores ELISA
comerciales.
Estabilidad de la solución de lavado: 1 semana a 22±3°C.
Incubación de las muestras, las referencias y el conjugado
1. Agregue 50 µL de tampón de dilución (Componente 5) a los pocillos
G1 y H1 de la placa de ensayo (Componente 1).
2. Agregue 40 µL de tampón de dilución al resto de pocillos.
3. Agregue 10 µL de referencia 1 (Componente 8) a los pocillos A1 y B1
(= DO450 blanco).
4. Agregue 10 µL de referencia 2 (Componente 9) a los pocillos C1 y D1.
5. Agregue 10 µL de referencia 3 (Componente 10) a los pocillos E1 y F1.
6. Agregue 10 µL de muestra a cada uno de los pocillos restantes.
7. Agregue 50 µL de la dilución de trabajo del conjugado a todos los
pocillos de la placa de ensayo.
8. Mezcle el contenido de las placas manualmente o con un agitador de
placas de microtitulación.
9. Tape las placas usando los selladores incluidos.
10. Incube durante 120±5 minutos a 22±3°C.
Incubación con la solución de sustrato cromógeno (TMB)
1. Vacíe la placa del ensayo y lávela 6 veces con 200 a 300 µL de solución
de lavado por pocillo. Golpéela bien luego del último lavado (no es
necesario empapar los pocillos con solución de lavado).
2. Agregue 100 µL de la solución de sustrato cromógeno (TMB)
(Componente 11) a cada pocillo.
3. Incube durante 20 minutos a 22±3°C.
4. Agregue 100 µL de solución de frenado (Componente 12) a cada pocillo.
5. Mezcle el contenido de los pocillos antes de realizar la medición.
Lectura del ensayo y cálculo de los resultados
1. Mida la densidad óptica (DO) de cada pocillo a 450 nm dentro de los
15 minutos posteriores a la finalización del desarrollo del color.
2. Calcule la DO450 media de los pocillos G1 y H1 (= DO450 máx).
3. Calcule la DO450 media de los pocillos A1 y B1
(referencia 1 = DO450 blanco).
4. Calcule la DO450 corregida de las referencias y todas las muestras
restando la DO450 blanco.
5. Calcule la inhibición porcentual (IP) de las referencias 2 y 3, y de las
muestras según la siguiente fórmula.
IP = 100 − (DO450 corregida de la muestra / DO450 corregida máx) × 100
Interpretación de los resultados
Criterios de validación
1. La DO450 media debe ser >1.000.
2. La DO450 media de la referencia 1 (DO450 blanco) debe ser <0.300.
3. La referencia 2 debe tener una inhibición porcentual de >50.
4. La referencia 3 debe tener una inhibición porcentual de <50.
El incumplimiento de al menos uno de estos criterios es motivo suficiente
para descartar los resultados de un ensayo específico.
Nota: Si la DO450 máx es inferior a 1.000, es probable que la solución de
sustrato cromógeno (TMB) esté demasiado fría. En ese caso, caliente la
solución hasta 22±3°C o incube durante 30 minutos.
Interpretación de la inhibición porcentual
IP = <50% Negativo
La muestra no contiene anticuerpos específicos
contra SVDV.
IP = ≥50% Positivo
La muestra contiene anticuerpos específicos
contra SVDV.
Recomendamos volver a analizar los sueros positivos con el PrioCHECK™
Porcine SVDV Ab Kit. Una vez concluidos estos análisis, los sueros posi-
tivos deben ser confirmados con una prueba de neutralización del virus.
Apéndice - Bibliografía
Chénard, G., Bloemraad, M., Kramps, J.A., Terpstra, C., Dekker, A (1998).
Validation of a monoclonal antibody-based ELISA to detect antibodies
directed against swine vesicular disease virus. Journal of Virological Methods,
75:105−112.
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Asistencia técnica: visite thermofisher.com/askaquestion
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asistencia, incluyendo lo siguiente:
• Números de teléfono de contacto de todo el mundo
• Pedidos y soporte web
• Guías de usuario, manuales y protocolos
• Certificados de análisis
• Fichas técnicas de seguridad (Safety Data Sheets, SDS; también
conocidas como MSDS)
NOTA: Para conocer las SDS de los reactivos y productos químicos de
otros fabricantes, póngase en contacto con el fabricante.
Garantía limitada del producto
Life Technologies Corporation y/o su(s) filiale(s) garantizan sus productos
tal y como se establece en los términos y condiciones generales de venta de
Life Technologies, que se pueden encontrar en el sitio web de Life
Technologies www.thermofisher.com/us/en/home/global/
terms-and-conditions. Si tiene alguna duda, póngase en contacto con Life
Technologies en thermofisher.com/support.
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2019
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