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20 noviembre 2019
Soluciones que debe tener preparadas
Suero equino
Reconstituya el suero equino (Componente 6) con 6 mL agua
desmineralizada (Componente 5). El suero equino reconstituido se puede
guardar a −20°C hasta su fecha de vencimiento.
La reconstitución de reactivos liofilizados debes hacerse del siguiente modo:
1. Equilibre el vial a 22±3°C.
2. Con el vial en posición vertical, golpéelo con cuidado contra la mesa
para asegurarse de que el contenido esté en el fondo del vial.
3. Abra el vial.
4. Agregue la cantidad necesaria de agua desmineralizada.
5. Cambie el tapón del vial y gírelo con cuidado de modo que el material
seco que quede se disuelva.
6. Deje el material liofilizado en reposo a 22±3°C durante 15 minutos.
7. Invierta el vial con cuidado de vez en cuando (evite la formación de
espuma).
Tampón de ELISA
Mezcle 1 volumen de suero de caballo reconstituido con 9 volúmenes de
tampón de dilución (Componente 3) (la concentración final de suero equino
en el tampón de ELISA debe ser del 10%).
Utilice un tampón nuevo cada vez que realice el ensayo. Por lo tanto,
prepare sólo la cantidad de tampón de ELISA que sea necesaria para el ciclo
de ensayos (11 mL por placa).
Dilución del conjugado
Prepare la dilución del conjugado (30x) (Componente 2) 1:30 en tampón de
ELISA. El ensayo requiere 11 mL por placa.
Nota: Debe preparar la dilución de trabajo justo antes de usarla.
Líquido de lavado
El líquido de lavado (200x) (Componente 4) debe diluirse 1:200 en agua
desmineralizada y es suficiente para un volumen final de 12 litros.
Estabilidad de la solución de lavado: 1 semana a 22±3°C.
Nota: Utilice lavadoras de ELISA comerciales. Si no tiene una a su
disposición, agregue 200 a 300 µL de solución de lavado a todos los
pocillos. Después, vacíe la placa y repita el proceso las veces necesarias. No
es necesario remojar la placa entre lavados. Golpee bien la placa después
del último lavado.
Incubación del suero
1. Agregue 100 µL de suero de referencia 1 (Componente 7) a los pocillos
A1 y B1.
2. Agregue 100 µL de suero de referencia 2 (Componente 8) a los pocillos
C1 y D1.
3. Agregue 100 µL de suero de referencia 3 (Componente 9) a los pocillos
E1 y F1.
4. Agregue 100 µL de muestra al resto de pocillos.
5. Selle la placa y agítela con cuidado.
6. Incube durante 60±5 minutos a 37±1°C (o a 22±3°C).
Incubación con el conjugado
1. Después del periodo de incubación, vacíe la placa y lávela 6 veces con
200 a 300 µL líquido de lavado. Golpéela bien después del último lavado.
2. Agregue 100 µL de conjugado diluido a todos los pocillos.
3. Selle la placa y agítela con cuidado.
4. Incube durante 60±5 minutos a 37±1°C (o a 22±3°C).
Incubación con sustrato cromógeno (TMB)
1. Luego del período de incubación, vacíe la placa y lávela 6 veces con
200 a 300 µL solución de lavado. Golpee bien la placa después del
último lavado.
2. Agregue 100 µL de sustrato cromógeno (TMB) (Componente 10) a
todos los pocillos.
3. Incube 20 minutos a 22±3°C.
4. Agregue 100 µL de solución de frenado (Componente 11).
5. Mezcle el contenido de los pocillos de la placa.
Nota: Agregue la solución de frenado 20 minutos después de haber llenado el
primer pocillo con sustrato cromógeno (TMB). Agregue la solución de frenado
en el mismo orden y lugar en que agregó el sustrato cromógeno (TMB).
Lectura del ensayo y cálculo de los resultados
1. Mida la densidad óptica (DO) de los pocillos a 450 nm, si es posible,
antes de que pasen 15 minutos, pero no más de 60, desde que finalice el
desarrollo de color.
2. Calcule la media de los pocillos E1-F1 (= DO450 máxima).
3. La inhibición porcentual (IP) de los sueros de referencia y de los sueros
del ensayo se calcula según la siguiente fórmula.
Nota: Los valores DO450 de las muestras se expresan como la inhibición
porcentual relativa a la DO450 máxima.
IP = 100 − (DO450 muestra / DO450 máx) × 100
Interpretación de los resultados
Criterios de validación
1. La DO450 máxima media debe ser al menos 1.000.
2. La inhibición porcentual media del suero de referencia 1 debe ser >50%.
3. La inhibición porcentual media del suero de referencia 2 debe ser <50%.
Si no se cumplen estos criterios, deben descartarse los resultados del ensayo.
Nota: Si la DO450 máxima media es inferior a 1.000, es posible que el sustrato
cromógeno (TMB) esté demasiado frío. En ese caso, caliente la solución
hasta 22±3°C o incube durante 30 minutos.
Interpretación de la inhibición porcentual
IP = ≥50% Positivo
La muestra contiene anticuerpos
específicos contra PRV gB.
IP = <50% Negativo
La muestra no contiene anticuerpos
específicos contra PRV gB.
Bibliografía
1. Van Oirschot JT, Houwers DJ, Rhiza HJ, Moonen PJ (1988). J Virol
Methods 22(2–3):191–206.
2. Ben-Porat T, DeMarchi JM, Lomniczi B, Kaplan AS (1986). Virology
154(2):325–334.
3. Peeters B, de Wind N, Hooisma M, Wagenaar F, Gielkens A,
Moormann RJ (1992). Virol 66(2):894–905.
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