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10 septiembre 2019
Soluciones que debe tener preparadas antes de comenzar
Tampón de dilución: solución de trabajo
El tampón de dilución (Componente 3) debe diluirse 5 veces en agua
desmineralizada o destilada. Para realizar un ensayo con una placa, prepare
45 mL (agregue 9 mL de tampón de dilución (5x) a 36 mL de agua
desmineralizada o destilada).
Estabilidad de la solución de trabajo del tampón de dilución:
2 semanas a 22±3°C.
Dilución del conjugado
Prepare la dilución del conjugado (Componente 2) en la solución de trabajo
del tampón de dilución. Para realizar un ensayo con una placa, prepare 12 mL
(agregue 0.4 mL de conjugado (30x) a 11.6 mL del tampón de dilución).
Nota: Debe preparar la dilución del conjugado justo antes de usarla.
Solución de lavado
El líquido de lavado (Componente 4) debe diluirse (200x) en agua
desmineralizada y es suficiente para lograr un volumen final de 12 litros.
Para realizar un ensayo con una placa, prepare 500 mL (agregue 2.5 mL de
Solución de lavado (200x) a 497.5 mL de agua desmineralizada o destilada).
Estabilidad de la solución de lavado: 1 semana a 22±3°C.
Incubación de los controles y las muestras de leche
1. Etiquete cada tira de la placas antigenadas (Componente 1) con un
marcador indeleble.
2. Dispensar 100 µL de las muestras de leche a los pocillos G1–H12 de la
placa test.
3. Agregue 90 µL de la solución del tampón de dilución a todos los
pocillos de la placa A1–F1 de la fila 1 de la placa test.
4. Agregue 10 µL de control negativo (Componente 5) a los pocillos A1 y B1.
5. Agregue 10 µL de control de validación (Componente 6) a los pocillos
C1 y D1.
6. Agregue 10 µL de control positivo (Componente 7) a los pocillos E1 y F1.
7. Selle las placas con un sellador.
8. Agite las placas durante 1 minuto, a nivel 700 (por ejemplo, con un
agitador de microplacas SLT EAS 2/4, rpm 1/min a nivel 700, SLT
Lab Instruments).
9. Incube las placas 60±5 minutos a temperatura ambiente (22±3°C).
Nota: La mezcla de la muestra con de la solución del tampón de dilución
es esencial para el ensayo.
Incubación con el conjugado
1. Vacíe la placa y lávela 6 veces con 200 a 300 µL de solución de lavado.
Golpee bien la placa después del último ciclo de lavado.
2. Agregue 100 µL de la solución de trabajo del conjugado a cada pocillo.
3. Selle la placa con un sellador.
4. Incube la placa 60±5 minutos a temperatura ambiente (22±3°C).
Incubación con la solución de sustrato cromógeno (TMB)
1. Vacíe la placa y lávela 6 veces con 200 a 300 µL de solución de lavado.
Golpee bien la placa después del último ciclo de lavado.
2. Agregue 100 µL de sustrato cromógeno (TMB) (Componente 8) a cada
pocillo.
3. Incube la placa 15 minutos a temperatura ambiente 22±3°C.
4. Agregue 100 µL de solución de frenado (Componente 9) a cada pocillo.
5. Mezcle el contenido de los pocillos.
Nota: Agregue la solución de frenado 15 minutos después de haber llenado
el primer pocillo con sustrato cromógeno (TMB). Agregue la solución de
frenado en el mismo orden y al mismo ritmo en que agregó el sustrato
cromógeno (TMB).
Lectura y cálculo de los resultados
1. Mida la densidad óptica (DO) de los pocillos a 450 nm, en lo posible, antes
de que pasen 15 minutos desde la finalización del desarrollo de color.
2. Calcule la DO450 media del control negativo (pocillos A1 y B1).
3. Calcule la DO450 media del control positivo (pocillos E1 y F1).
4. Calcule la DO450 corregida del control positivo, el control de validación
y de todas las muestras, restando el valor promedio de DO450 del
control negativo (pocillos A1 y B1).
5. Calcule el porcentaje de positividad (PP) de todos los controles y de las
muestras del ensayo según la siguiente fórmula.
La DO450 de todas las muestras se expresa como el porcentaje de positividad
(PP) del valor de DO450 del control positivo (CP) (pocillos E1 y F1) corregido
con la DO450 media del control negativo (CN) (pocillos A1 y B1).
PP = (DO450 corregida muestra / DO450 corregida Control Positivo × 100) − 10
Interpretación de los resultados
Criterios de validación
1. La DO450 media del control negativo (pocillos A1 y B1) debe ser <0.4.
2. La DO450 del control positivo (sin corregir) debe ser >1.000.
3. El porcentaje de positividad del control de validación debe ser ≥30.
El incumplimiento de estos criterios es motivo suficiente para descartar los
resultados de un ensayo específico.
Nota: Si la DO450 del control positivo (sin corregir) es inferior a 1.000, es
posible que el sustrato cromógeno (TMB) se encuentre demasiado frío. En
ese caso, lleve la solución a 22±3°C o incúbela durante 30 minutos.
Interpretación del porcentaje de positividad
PP = <35% Negativo
La muestra no contiene anticuerpos
específicos contra
Salmonella
.
PP = ≥35% Positivo
La muestra contiene anticuerpos específicos
contra
Salmonella
.
En programas avanzados de control de Salmonella este test puede ser
utilizado con un punto de corte diferente. Queda bajo la exclusiva
responsabilidad de las autoridades respectivas / los usuarios implementar
dicho punto de corte.
Asistencia al cliente y soporte técnico
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• Pedidos y soporte web
• Guías de usuario, manuales y protocolos
• Certificados de análisis
• Fichas técnicas de seguridad (Safety Data Sheets, SDS; también
conocidas como MSDS)
NOTA: Para conocer las SDS de los reactivos y productos químicos de
otros fabricantes, póngase en contacto con el fabricante.
Garantía limitada del producto
Life Technologies Corporation y/o su(s) filiale(s) garantizan sus productos
tal y como se establece en los términos y condiciones generales de venta de
Life Technologies, que se pueden encontrar en el sitio web de
Life Technologies www.thermofisher.com/us/en/home/global/
terms-and-conditions. Si tiene alguna duda, póngase en contacto con
Life Technologies en thermofisher.com/support.
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2019
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