2 PrioCHECK™ Porcine HEV Ab Strip Kit Instrucciones de Uso
Procedimiento del ensayo
Precauciones
• Se deben seguir estrictamente las normas nacionales de seguridad.
• PrioCHECK™ Porcine HEV Ab Strip Kit debe usarse en laboratorios
adecuados para este propósito.
• Las muestras deben ser consideradas como potencialmente infecciosas
y todos los objetos que entren en contacto con las muestras como
potencialmente contaminados.
Notas
Para lograr unos resultados óptimos con el ensayo PrioCHECK™ Porcine
HEV Ab Strip Kit, debe tener en cuenta los siguientes aspectos:
• Hay que seguir estrictamente el protocolo del ensayo.
• Se deben cambiar las puntas de las pipetas tras cada pipeteo.
• Hay que usar recipientes independientes para cada reactivo.
• Los componentes del kit no deben ser utilizados tras la fecha de
caducidad o si se observan cambios en su aspecto.
• No deben utilizarse juntos componentes de kits con números de lote
diferentes.
• Se debe usar agua desmineralizada para el ensayo.
Preparación de muestras
• El suero se puede obtener mediante los métodos habituales.
• Si se analiza jugo de carne, p. ej., un trozo de tejido muscular de 10 g
que se debe congelar y descongelar en un dispositivo especial o que se
puede exprimir para obtener jugo de carne.
• Las muestras inactivadas por calor puede producir problemas de e
fondo y por lo tanto su uso no está recomendado.
Dilución de la muestra para muestras de suero
Las muestras de suero deben diluirse 1:100 y los controles 1:100.
1. Use una placa sin recubrir o equivalente para la dilución muestra.
2. Añada 10 µL de control positivo a los pocillos A1 y B1 de la placa sin
recubrir.
3. Añada 10 µL de control de punto de corte a los pocillos C1 y D1 de la
placa sin recubrir.
4. Añada 10 µL de control negativo a los pocillos E1 y F1 de la placa sin
recubrir.
5. Añada 10 µL de las muestras de suero al resto de pocillos de la placa
sin recubrir.
6. Añada 90 µL de tampón de dilución a cada pocillo de la placa sin
recubrir y mezcle tomando y soltando la muestra 5 veces con una
pipeta.
7. Añada 90 µL de tampón de dilución a cada pocillo de la placa de
ensayo.
8. Transfiera 10 µL de las muestras diluidas y de sus controles de la placa
sin recubrir a la placa de ensayo y mezcle tomando y soltando la
muestra 5 veces con una pipeta.
Dilución de la muestra para muestras de jugo de carne
Las muestras de juego de carne deben diluirse 1:10 y los controles 1:100.
1. Use una placa sin recubrir o equivalente para la dilución muestra.
2. Añada 10 µL de control positivo a los pocillos A1 y B1 de la placa sin
recubrir.
3. Añada 10 µL de control de punto de corte a los pocillos C1 y D1 de la
placa sin recubrir.
4. Añada 10 µL de control negativo a los pocillos E1 y F1 de la placa sin
recubrir.
5. Añada 90 µL de tampón de dilución a todos los pocillos que contengan
controles A1 a F1 de la placa sin recubrir.
6. Añada 100 µL de las muestras de jugo de carne al resto de pocillos de
la placa sin recubrir.
7. Añada 90 µL de tampón de dilución a todos los pocillos de la placa del
ensayo.
8. Transfiera 10 µL de las muestras de jugo de carne y de los controles
diluidos de la placa sin recubrir a la placa de ensayo y mezcle
tomando y soltando la muestra 5 veces con una pipeta.
Incubación de la muestra
1. Coloque con cuidado un film sellador sin usar en la placa de ensayo.
2. Incube las muestras de la placa de ensayo durante 60±1 minutos a
37±3°C.
3. Lave la placa de ensayo cuatro veces con 300 µL de solución de lavado
1x (véase Anexo A).
4. Dé unos golpecitos a la placa sobre una toallita de papel para eliminar
cualquier resto de líquido que quede en los pocillos.
Incubación del conjugado
Pasos previos
Diluya la cantidad necesaria de conjugado (100x) 100 veces en tampón de
dilución (p. ej., Añada 100 µL de conjugado a 9.9 mL de tampón de
dilución para una placa completa, véase Anexo A).
Incubación del conjugado
1. Añada 100 µL de conjugado diluido a cada pocillo de la placa de
ensayo.
2. Coloque con cuidado un film sellador sin usar en la placa de ensayo.
3. Incube la placa de ensayo durante 30±1 minutos a 37±3°C.
4. Lave la placa de ensayo cuatro veces con 300 µL de solución de
lavado 1x (véase Anexo A).
5. Dé unos golpecitos a la placa sobre una toallita de papel para eliminar
cualquier resto de líquido que quede en los pocillos.
Detección
Reacción del sustrato
1. Añada 100 µL sustrato cromógeno (TMB) a cada pocillo de la placa de
ensayo.
2. Incube la placa de ensayo durante 30±10 minutos a 22±3°C.
3. Añada 100 µL de solución de frenado a cada pocillo de la placa de
ensayo.
Nota: Añada solución de frenado en el mismo orden en que se agregó la
solución de sustrato cromógeno (TMB).
Nota: El color de los controles positivos cambiará de azul a amarillo.
Detección
1. Agite brevemente la placa de ensayo (5–10 s) en un agitador orbital
(~300 rpm) o manualmente en la mesa de trabajo.
2. Lea la placa de ensayo en el lector de placas ELISA a 450 nm antes de
60 minutos.
Recomendación: Use un filtro de referencia a 620 nm.
Interpretación de los resultados
Criterios de validación
1. La DO450 media de los controles positivos menos la DO450 del control de
punto de corte debe ser ≥0.3.
2. La DO450 media de los controles de punto de corte menos la DO450 del
control negativo debe ser ≥0.05.
3. La DO450 media de los controles negativos debe ser <0.15.
Si no se cumplen estos criterios, los resultados no son válidos y deben
volver a realizar el ensayo.
Cálculo del punto de corte
El punto de corte se calcula multiplicando por 1.2 la DO450 media del
control de punto de corte.
media DO450 del control Cut-off × 1.2 = Punto de Corte
Interpretación de los resultados
• Los resultados iguales o superiores al punto de corte se consideran
positivos.
• Los resultados entre la DO450 del control de punto de corte y el punto
de corte del ensayo (consulte cómo calcularlo en un punto anterior)
son dudosos y se recomienda volver a analizar esas muestras. Si
continúan siendo dudosos, debe tomar y analizar una segunda
muestra recogida en un momento posterior.
• Los resultados obtenidos inferiores al punto de corte son negativos.