2 PrioCHECK™ Porc. Salmonella Ab 2.0 Plate Kit Instrucciones de Uso
Soluciones que debe tener preparadas antes de comenzar
Tampón de dilución: solución de trabajo
El tampón de dilución (componente 3) debe ser diluido 5 veces en agua
desmineralizada o destilada. Para realizar un ensayo con una sola placa,
preparar 45 mL (añadir 9 mL de tampón de dilución (5x) a 36 mL de agua
desmineralizada o destilada).
Estabilidad de la solución de trabajo del tampón de dilución: 24 horas a
22±3°C.
Dilución de conjugado
Preparar la dilución del conjugado (componente 2) en solución de trabajo
del tampón de dilución. Para realizar un ensayo con una sola placa,
preparar 12 mL (añadir 0.4 mL de conjugado concentrado (30x) a 11.6 mL
de tampón de dilución).
Nota: El conjugado diluido es estable hasta 24 hs.
Solución de lavado
El líquido de lavado (componente 4) se debe diluir (100x) en agua
desmineralizada o destilada y es suficiente para un volumen final de 6 litros.
Para realizar un ensayo con una placa, preparar 500 mL (añadir 5 mL de
solución de lavado (100x) a 495 mL de agua desmineralizada o destilada).
Estabilidad de la solución de lavado: 1 semana guardada a 22±3°C.
Pre-dilución de muestras para el ensayo 20x en una placa de
dilución
1. Dispense 10 µl de cada muestra de prueba en los pocillos adecuados de
la placa de dilución (consulte la Tabla 1), dependiendo de los requisitos
del experimento.
Nota: Las muestras de prueba se pueden añadir a un pocillo (una
prueba) o a dos pocillos adyacentes (prueba duplicada).
2. Dispense 190 µl del tampón de dilución (solución de trabajo) a cada
pocillo que contenga una muestra y, a continuación, mezcle el
contenido de los pocillos.
3. Agite la placa o placas de dilución durante 1 minuto a 700 RPM (1/min).
Nota: Mezclar la muestra con solución de trabajo del tampón de dilución
es esencial para el ensayo.
Incubación de muestras de control y de ensayo
Consulte en la Tabla 2 la disposición de la placa de ensayo recomendada.
1. Etiquete cada columna de la placa de ensayo (componente 1) con un
marcador permanente.
2. Agregar 90 µL de solución de trabajo del tampón de dilución en todos
los pocillos de la placa de ensayo.
3. Transfiera 10 µl de cada muestra prediluida de la placa de dilución a los
pocillos correspondientes de la placa de ensayo.
4. Agregar 10 µL del control negativo (componente 5) a pocillos A1 y B1.
5. Agregar 10 µL del control positivo (componente 7) a pocillos C1 y D1.
6. (Opcional) Agregar 10 µL del control de validación (componente 6) a
pocillos E1 y F1.
7. Agite la placa o placas durante 1 minuto a 700 RPM (1/min).
8. Incubar la(s) placa(s) de ensayo por 30±3 minutos a temperatura
ambiente (22±3°C).
Incubación con conjugado
1. Vacíe la placa de ensayo, luego lave la placa 3 veces con 200–300 µL de
líquido de lavado diluido. Sacuda la placa firmemente después del
último ciclo de lavado.
2. Distribuya 100 µL de la solución de trabajo del conjugado en todos los
pocillos.
3. Incubar la placa durante 30±3 minutos a temperatura ambiente 22±3°C.
Incubación con sustrato cromogénico (TMB)
1. Vacíe la placa de ensayo, luego lave la placa 3 veces con 200–300 µL de
líquido de lavado diluido. Sacuda la placa firmemente después del
último ciclo de lavado.
2. Distribuya 100 µL de sustrato cromogénico (TMB) (componente 8) en
todos los pocillos.
3. Incubar la placa durante 15±1 minutos a 22±3°C.
4. Agregar 100 µL de solución de frenado (componente 9) a todos los
pocillos.
5. Mezclar el contenido de los pocillos de la placa.
Nota: Iniciar el agregado de solución de frenado 15 minutos después de
haber llenado el primer pocillo con sustrato cromogénico (TMB). Agregar la
solución de frenado en el mismo orden y con el mismo ritmo con el que se
distribuyó que el sustrato cromogénico (TMB).
Lectura del ensayo y cálculo de los resultados
1. Medir la densidad óptica (OD) de los pocillos a 450 nm,
preferentemente dentro de los 15 minutos después de que se detuvo el
desarrollo de color.
2. Calcular el valor principal OD450 del control positivo (pocillos C1 y D1).
3. Calcular el valor principal OD450 del control negativo (pocillos A1 y B1).
4. Calcule el valor corregido de la OD450 del control positivo, el control de
validación (si se utilizara) y de todas las muestras sustrayendo la OD450
media del control negativo (pocillos A1 y B1).
5. Calcular la positividad porcentual (PP) de todos los controles y de las
muestras de ensayo conforme a la siguiente fórmula.
La OD450 de todas las muestras está expresada como positividad porcentual
(PP) de control positivo (PC) (pocillos C1 y D1) corregida con la OD450
principal del control negativo (NC) (pocillos A1 y B1).
PP = OD450 muestra de ensayo - OD450 principal NC
OD450 PC - OD450 principal NC × 120
Interpretación de resultados
Criterios de validación
1. La OD450 principal del control negativo (pocillos A1 y B1) debe ser <0.4.
2. La OD450 del control positivo (no corregida) debe ser >1.0.
3. Si se utilizó el control de validación, la positividad porcentual del
control de validación debe ser ≥60.
No satisfacer estos criterios es razón para descartar los resultados de esa
placa de ensayo específica.
Nota: Si la OD450 del control positivo (no corregida) es inferior a 1.0,
posiblemente el sustrato cromogénico (TMB) esté demasiado frío. En ese
caso, calentar la solución a 22±3°C o incubar hasta 30 minutos.
Interpretación de la positividad porcentual
PP <40% Negativa
Hay ausencia de anticuerpos específicos contra
Salmonella
en la muestra para ensayo.
PP ≥40% Positiva
Hay presencia de anticuerpos específicos contra
Salmonella
en la muestra para ensayo.
En programas avanzados de control de Salmonella, el ensayo puede ser
usado con un punto de corte diferente (p.ej., 20% PP). Queda bajo la
responsabilidad de las respectivas autoridades/usuarios implementar estos
puntos de corte.
Disposiciones de placa recomendadas
Las siguientes disposiciones de placa permiten una transferencia eficaz de
las muestras prediluidas de la placa de dilución a la placa de ensayo
(X — Vacío; S — Muestra; P — Control positivo; N — Control negativo;
V — Control de validación [opcional]).
Tabla 1 Disposición de la placa de dilución
(1) Si utiliza el control de validación, deje los pocillos E1 y F1 vacíos.
Tabla 2 Disposición de la placa de pruebas
Referencias
1. Nielsen B, Baggesen D, Bager F, Haugegaard J, Lind P (1995). Veterinary
Microbiology 47:205–218.
2. Van der Heijden HMF (2001). First International Ring Trial of ELISA’s
for Salmonella-antibody. Berl Münch Tierärztl Wschr 389–392.