16306, 16307, 16315, 16316
Bedienungsanleitung
Glas-Vakuumfiltrationsgeräte
Directions for Use
Glass Vacuum Filter Holders
Mode d’emploi
des appareils de filtration sous vide en verre
Instrucciones para el uso
de los aparatos de filtración al vacío de vidrio
Istruzioni per l’uso
di apparecchi in vetro per filtrazione sottovuoto
80123-000-50
80123-000-50
2 |
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1. Technische Daten
2. Lieferumfang
3. Reinigen und Pflegen des Filtrationsgerätes
4. Zusammensetzen des Filtrationsgerätes
5. Klarfiltration
6. Sterilfiltration
7. Mikrobiologische Untersuchungen
8. Analytische Bestimmungen
9. Empfehlenswertes Zubehör
10. Ersatzteile
Glas-Vakuumfiltrationsgeräte sind jeweils in zwei
Ausführungen erhältlich. Sie unterscheiden sich ledig-
lich durch die Filterunterstützung, die aus einem
PTFE-Ring besteht, der entweder eine Glasfritte oder
ein PTFE-beschichtetes Lochblech mit Stützsieb
enthält.
Die Filterunterstützung sind nur als Einheit
austauschbar.
Die Geräte mit Glasfritte werden wegen der besonders
gleichmäßigen Verteilung des Rückstandes auf der
Membranfilteroberfläche bevorzugt für die Rückstands-
analyse eingesetzt.
Die Geräte mit PTFE-beschichtetem Lochblech
werden hauptsächlich für die Klar- oder Sterilfiltration
(Litervolumina) eingesetzt.
Inhaltsverzeichnis
4 |
Material: Borosilicatglas 3.3 (DIN-ISO 3585)
Klammer: Eloxiertes Aluminium
Filterunterstützung: a) Glassinterfritte im PTFE-Ring,
mit Zentrierrand oben und Silikon-O-Ring unten oder
b) PTFE-beschichtetes Lochblech auf einem Stützsieb
im PTFE-Ring, mit Zentrierrand oben und Silikon-
O-Ring unten.
Geräte Nr. 16306* 16307*
16315** 16316**
Silikon-O-Ring 25 + 3 mm 45 + 3 mm
Filterdurchmesser 25 mm 50 mm
(oder 24) (oder 47)
Vorfilterdurchmesser 20 mm 40 mm
Filtrationsfläche 3 cm2 12,5 cm2
Fassungsvermögen 30 ml 250 ml
Auslaufstutzen:
Außendurchmesser 12 mm 15 mm
Betriebsdruck nur Unterdruck nur Unterdruck
Sterilisation Autoklavieren bis 134° C,
Trockenhitze bis 180° C
Die zu verwendenden Bedingun-
gen sind von dem eingesetzten
Membranfilter abhängig.
** mit Glasfritte
** mit PTFE-Lochblech
1. Technische Daten
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Entnehmen Sie das Gerät der Verpackung und
überprüfen Sie mit Hilfe der folgenden Liste die
Vollständigkeit der Lieferung:
Lieferumfang In Abb. 1
1 Deckel (nur 16307 und 16316) Nr. 1
1 Glasaufsatz Nr. 2
1 Klammer Nr. 3
1 Filterunterstützung mit Glasfritte
bzw. PTFE-Stützsieb u. PTFE-Lochblech Nr. 4
1 Silikon-O-Ring Nr. 5
1 Glasunterteil Nr. 6
2. Lieferumfang
Abb.1
6 |
Um eine lange Lebensdauer und Funktionstüchtig-
keit zu gewährleisten, ist es notwendig, das Gerät vor
dem ersten Gebrauch und nach jeder Benutzung zu
reinigen.
Gehen Sie so vor:
3.1 Zerlegen Sie das Gerät in seine Einzelteile (Abb.1).
3.2 Säubern Sie alle Teile mit warmen Wasser und
handelsüblichen Laborreinigungsmitteln (für Metall,
Glas, Kunststoff) und weichen Bürsten.
3.3 Spülen Sie die Teile mit heißen Wasser und danach
mit dest. Wasser ab.
3.4 Trocknen Sie die Teile im Preßluftstrom oder
an der Luft. Keine Verwendung von Tüchern,
wegen evtl. Faserabgabe.
4. Zusammensetzen des Filtrationsgerätes
und Einlegen des Membranfilters
Für den Aufbau eines Vakuumfiltrationsystems
benötigen Sie zusätzlich:
– 1 Stopfen (siehe Empfehlenswertes Zubehör)
– 1 Saugflasche (16672)
– 1 Vakuumquelle (z.B. 16612)
– Vakuumschlauch (16623)
– 1 Woulff’sche Flasche (16610) bzw. 1 Vacusart
(17804-M)
– 1 Pinzette für die Handhabung der Membranfilter
(Abb. 2).
Falls Sie große Mengen an Routineuntersuchungen
durchführen wollen, empfehlen wir Ihnen unsere
3- oder 6-fache Absaugvorrichtung mit der
entsprechen den Anzahl an Filtrationsgeräten und
Verbindungs stücken (siehe Empfehlenswertes Zubehör).
3. Reinigen und Pflegen des
Filtrations gerätes
| 7
4.1 Versehen Sie das Glasunterteil mit dem entsprechen den
Stopfen und setzen Sie es auf die Saugflasche
(Abb. 3).
4.2 Stellen Sie mit Hilfe des Vakuumschlauchs die
Verbindung zwischen Saugflasche und Vakuumquelle
(z.B. eine Wasserstrahlpumpe) her (Abb. 4).
Wird als Vakuumquelle eine elektrische Pumpe
einge setzt, so muß zum Schutz vor überschäu-
mendem Filtrat zwischen Saugflasche und Pumpe eine
Woulff’sche Flasche (Abb. 5) oder ein Vacusart (17804-
M) eingesetzt werden. Beim Einbau des Vacusart ist
darauf zu achten, daß das übergetretene Filtrat in die
Saugflasche zurück laufen kann und nicht im Schlauch
stehenbleibt.
4.3 Versehen Sie die Filterunterstützung auf der Unterseite
mit dem Silikon-O-Ring und auf der Ober seite mit der
Glasfritte bzw. dem Stützsieb und dem PTFE-beschich-
teten Lochblech. Legen Sie zunächst das Stütz sieb mit
der glatten Seite nach oben ein und drücken Sie das
PTFE-Lochblech (der Außenrand zeigt nach unten)
paßgenau in die dafür vorgesehene Vertiefung.
Dann legen Sie die Filterunterstützung auf das Glas-
unterteil (Abb. 6).
4.4 Nehmen Sie das Membranfilter mit Hilfe einer Pinzette
aus der Verpackung und legen Sie es zentrisch auf die
Filterunterstützung.
Bei Verwendung eines Vorfilters legen Sie dieses dann
anschließend zentrisch auf das Membranfilter.
Der Durchmesser des Vorfilters darf die unter
»1. Technische Daten« angegebenen Maße nicht
überschreiten. (Abb.7)
4.5 Setzen Sie den Glasaufsatz paßgenau auf das
Unterteil und verschließen Sie beide Teile mittels
der Verschlußklammer (Abb. 8).
8 |
5.1 Zusammensetzen des Filtrationsgerätes und Einlegen
des Membranfilters wie unter 4. beschrieben.
5.2 Füllen Sie die zu filtrierende Flüssigkeit
in den Glasaufsatz (Abb. 9) und schalten Sie die
Vakuumpumpe ein.
Hinweis:
Wenn Sie für die Filtration zusätzlich ein Vorfilter ver-
wenden, empfehlen wir erst die Vakuumpumpe einzu-
schalten und dann die zu filtrierende Flüssigkeit in den
Glasaufsatz zu füllen (sonst könnte das Vorfilter nach
oben schwimmen).
5.3 Die Filtration ist beendet, wenn keine Flüssigkeit mehr
auf dem Membranfilter steht. Nehmen Sie das Vakuum
vom Gerät, indem Sie bei einer Wasserstrahl pumpe
einfach den Schlauch von der Olive der Saugflasche
abziehen (Abb.10).
Bei Arbeiten mit Woulff’scher Flasche und Vakuum-
pumpe, schalten Sie die Pumpe ab und entspannen die
Woulff’sche Flasche (Abb.11).
5.4 Nun können Sie das Filtrationsgerät mit Stopfen von
der Saugflasche nehmen und das Filtrat umfüllen oder
auch direkt in der Saugflasche belassen.
6. Sterilfiltration
(nur mit PTFE-beschichteten Lochblech als Filterunter-
stützung möglich, nicht mit Glasfritte)
6.1 Zusammensetzen des Gerätes und Einlegen des
Membranfilters wie unter 4. beschrieben, jedoch ohne
Anschluß an eine Vakuumquelle bzw. Woulff’sche
Flasche.
5. Klarfiltration
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Nylonfilter (Sartolon) sind grundsätzlich naß
einzulegen.
6.2 Versehen Sie die Olive der Saugflasche mit Hilfe eines
kurzen Vakuumschlauchs mit einem Vacusart (17804-
M) (Abb.12).
6.3 Verschließen Sie den Glasaufsatz mit dem Silikondeckel
und Watte oder mit Alu-Folie (Abb.13).
6.4 Das Gerät wird bei 121° C und 1 bar 30 Minu ten
autoklaviert (dies ist mit allen entsprechenden Sarto-
rius Stedim Biotech Membranfiltern durchzuführen,
ausgenom men Gelatine und Polyamid-Membranfilter).
Membranfilter aus Celluloseacetat 111.. und aus PTFE
118.. (ebenso die Glasfaserfilter 134..) können alter-
nativ im Filtrationsgerät mit Trockenhitze von 180° C
über
2 Stunden oder 160° C über 3 Stunden sterilisiert
werden (Filter trocken einlegen).
6.5 Nach dem Sterilisieren der Filtrationseinheit führen
Sie die Sterilfiltration wie eine Klarfiltration durch.
Beachten Sie sterile Bedingungen.
7. Mikrobiologische Untersuchungen
Für die mikrobiologische Untersuchung ist es erforder-
lich, das Filtrationsgerät mit eingelegtem
Filter zu sterilisieren (autoklavieren 121° C, 30 Minuten
oder Trockenhitze 180° C, 2 Std.). Anschließend führen
Sie die Filtration durch, entnehmen das Membranfilter
und inkubieren es auf entsprechenden Nährmedien.
8. Analytische Bestimmungen
Die Glasfiltrationsgeräte eignen sich in Verbindung
mit Membranfiltern sehr gut für z.B. gravimetrische
Bestimmungen, Partikeltests etc.
10 |
Filtrationsgerät Nr.
Artikelbezeichnung 16306* 16307*
16315** 16316**
Fluorelastomer-O-ring 00118 00124
Stopfen 17174 17175
Edelstahladapter mit Stopfen
für Edelstahlabsaug-
vorrichtung, 3fach und 6fach 16836 16837
Edelstahlabsaugvorrichtung,
3fach 16842 16842
Edelstahlabsaugvorrichtung,
6fach 16843 16843
Brutschrank 220 V, 50 Hz – 18113
** mit Glasfritte als Filterunterstützung
** Mit PTFE-Lochblech als Filterunterstützung
Das weitere Zubehör ist für alle Geräte gleich:
16672 Saugflasche, 2 l
16623 Gummi-Vakuumschlauch, 1 m
16611 Wasserstrahlpumpe
mit G3/4 Innengewinde
16612 Laborvakuumpumpe, 220 V, 50 Hz
16692 Vakuumpumpe, 220 V, 50 Hz
16610 Woulff’sche Flasche
17804-M Vacusart
16625 Edelstahlpinzette
9. Empfehlenswertes Zubehör
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16306, 16315:
6980115 Glasaufsatz, 30 ml
6980116 Glasunterteil, 25 mm
6980117 Silikon-O-Ring, 25 + 3 mm
6983008 Verschlußklammer
17148 PTFE-Ring mit Glasfritte und
Silikon-O-Ring (für 16306)
17149 PTFE-Ring mit PTFE-beschichtetem
Stützsieb und Lochblech sowie
Silikon-O-Ring (für 16315)
16306
16315
10. Ersatzteile
(siehe Zeichnung)
12 |
16307, 16316:
6980119 Glasaufsatz, 250 ml
6980120 Glasunterteil, 50 mm
6980121 Deckel aus Silikonkautschuk
6980123 Silikon-O-Ring, 45 + 3 mm
6983006 Glasfritte
6983007 PTFE-Lochblech
6983009 Verschlußklammer
6983010 Stützsieb, PTFE-beschichtet
17146 PTFE-Ring mit Glasfritte und
Silikon-O-Ring (für 16307)
17147 PTFE-Ring mit PTFE-beschichtetem
Stützsieb und Lochblech sowie
Silikon-O-Ring (für 16316)
16307
16316
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1. Specifications
2. Equipment Supplied
3. Cleaning and Care of the Filter Holder
4. How to Assemble the Filter Holder
5. Clarifying Filtration
6. Sterile Filtration
7. Microbiological Testing
8. Analytical Methods
9. Recommended Accessories
10. Spare Parts
Glass vacuum filter holders are available in two types
which differ only in the filter support, which is a PTFE
ring. This ring contains either a glass frit or a PTFE-
coated stainless steel screen and an underdrain screen.
The filter supports may only be changed as a unit.
Because of the particularly even distribution of parti-
culates of the membrane filter surface, filter supports
with glass frits are preferred for use in particulate
analysis.
Filter supports with a PTFE-coated screen are mainly
used for clarifying or sterile filtration of liter volumes.
Table of Contents
14 |
Materials: Borosilicate glass (3.3 DIN-ISO 3585)
Clamp: Anodized aluminum
Filter support: a) Sintered glass frit in a PTFE ring,
with a centering rim on top and silicone O-ring on
the bottom, or b) PTFE-coated stainless steel screen on
an underdrain screen in a PTFE ring, with a centering
rim on top and a silicone O-ring on the bottom.
Filter Holder No. 16306* 16307*
16315** 16316**
Silicone O-ring 25 + 3 mm 45 + 3 mm
Filter diameter 25 mm 50 mm
(or 24) (or 47)
Prefilter diameter 20 mm 40 mm
Filtration area 3 cm2 12.5 cm2
Capacity 30 ml 250 ml
Connections:
Outer diameter of outlet 12 mm 15 mm
Operating pressure vacuum only vacuum only
Sterilization: Autoclave up to 134°C maxi-
mum, or use dry heat up to
180°C maximum depending
on the membrane filter used.
** with a glass frit
** with a PTFE-coated stainless steel screen
1. Specifications
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Remove the filter holder from the packaging and check
the list below to make sure you have all the necessary
parts:
Equipment supplied Shown in
Fig.1 as:
1 Lid (16307 and 16316 only) No. 1
1 Glass funnel No. 2
1 Clamp No. 3
1 Filter support with glass frit or PTFE-
coated support screen and PTFE
underdrain screen No. 4
1 Silicone O-ring No. 5
1 Glass base No. 6
2. Equipment supplied
Fig.1
16 |
To ensure long service life and proper functioning of
the filter holder, it must be cleaned before the first use
and after every filtration run.
Proceed as follows:
3.1 Completely disassemble the filter holder
as indicated in the list of parts (see Fig.1).
3.2 Use a soft brush, warm water, and a gentle, commer-
cially available laboratory detergent (for metal, glass
and plastics) to clean all parts.
3.3 Rinse all parts first with hot water, then with distilled
water.
3.4 Dry the parts with compressed air, or let them dripdry.
Do not use towels or cloth as they may leave lint on
the filter holder.
4. How to Assemble the Filter Holder and
Insert the Membrane Filter
To assemble the vacuum filtration system, you will
need in addition:
– 1 Stopper (see “Recommended Accessories”)
– 1 Suction flask (16672)
– 1 Vacuum source (e.g., 16612 or 16615)
– Vacuum hose (16623)
– 1 Woulff’s bottle (16610) or 1 Vacusart (17804-M)
– Pair of forceps for handling the membrane filter
(see Fig. 2).
For large numbers of routine tests, we recommend our
3-place or 6-place vacuum manifold along with the
corresponding number of filter holders and connectors.
(See “Recommended Accessories.”)
3. Cleaning and Care of the Filter Holder
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4.1 Place the appropriate stopper on the glass base and
insert it into the suction flask (see Fig. 3).
4.2 Using a vacuum hose, connect the suction flask and
vacuum source, such as a water jet pump (see Fig. 4).
If an electric pump is used as a vacuum source,
a Woulff’s bottle (see Fig. 5) or a Vacusart (17804-M)
must be connected between the suction flask and
the pump in order to prevent the filtrate from foa-
ming over and entering the pump. When installing the
Vacusart (17804-M) , be sure that any filtrate overflow
can return to the suction flask, and will not be
entrapped in the hose.
4.3 Press-fit the silicone O-ring on the underside of the
filter support and place the glass frit or support screen
and underdrain screen on top. To do so, place the
underdrain screen with the smooth side up in the filter
support and press on the PTFE-coated support screen
with the outside edge facing down so that it fits exactly
into the indentation.Then put the filter support on the
glass base (see Fig. 6).
4.4 Using forceps, remove the membrane filter from the
packaging and center it on the filter support.
If you need to use a prefilter, center it on the membra-
ne filter at this point. The diameter of the prefilter may
not exceed the dimensions listed in the “Specifications”
(see Fig. 7).
4.5 Set the glass funnel on top of the base so that it fits
exactly and clamp the two parts together (see Fig. 8).
18 |
5.1 Assemble the filter holder and insert the membrane
filter as described in section 4.
5.2 Pour the liquid to be filtered into the glass
funnel (see Fig. 9) and switch on the vacuum pump.
Important Note:
If you are additionally using a prefilter, switch the va-
cuum pump on before filling the funnel with the liquid
to be filtered. (Otherwise, the prefilter may float to the
top of the liquid.)
5.3 Filtration is completed when all the liquid has passed
through the membrane filter. Disconnect the vacuum
source from the filter holder by pulling the hose off
the hose nipple on the suction flask (if the water jet
pump is used; see Fig.10). If a Woulff’s bottle and a
vacuum pump have been used, switch off the pump
and release vacuum via the Woulff’s bottle (see Fig.11).
5.4 Now remove the filter holder and stopper from the
suction flask and transfer the filtrate to another con-
tainer or leave it in the suction flask.
6. Sterile Filtration
(This is possible only with the filter support and
PTFE-coated screen, and not the glass filter support.)
6.1 Assemble the filter holder and insert the mem brane
filter as described in section 4; however, do not con-
nect the filter holder to a vacuum source or a Woulff’s
bottle.
5. Clarifying Filtration
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Important Note:
Wet cellulose nitrate filters before placing them in wet
filter holders. If the filter holder is dry, cellulose nitrate
filter must also be dry. Always make it a point to wet
cellulose acetate filters and nylon filters (Sartolon)
before placing them in a filter holder.
6.2 Use a short length of vacuum tubing to attach
a Vacusart (17804-M) to the nipple of the suction
bottle (see Fig.12).
6.3 Close the glass funnel with either the silicone
lid and a piece of cotton or with aluminum foil
(see Fig.13).
6.4 Autoclave the filter holder at 121°C and 1 bar
(14.5 psi) for 30 minutes. (This may be done with all
Sartorius Stedim Biotech membrane filters except for
gelatin and polyamide filters.)
Cellulose nitrate membrane filters (111..) and PTFE
membrane filters (118..) as well as glass fiber filters
(134..) may be sterilized by dry heat for either 2 hours
at 180°C or for 3 hours at 160°C.
(Do not wet the filters before placing them
in filter holders.)
6.5 After sterilizing the assembled filtration unit, proceed
with the filtration run as with clarifying filtration.
Be sure to maintain sterile conditions.
7. Microbiological Testing
For microbiological testing, it is necessary to sterilize
the filter holder containing the membrane filter.
Either autoclave the filter at 121°C for 30 min., or use
dry heat at 180°C for 2 hours. After sterilizing, perform
the filtration run, then remove the membrane filter and
incubate it on the required culture medium|media.
8. Analytical Methods
Sartorius Stedim Biotech Vacuum Filter Holders made
of glass are especially suited for analysis, e.g.,
gravimetric determinations, particulate analysis, etc.
20 |
Filter Holder No.
Product Name 16306* 16307*
16315** 16316**
Fluoroelastomer O-ring 00118 00124
Stopper 17174 17175
Stainless steel adapter
with stopper for
stainless steel 3-place
and 6-place manifold 16836 16837
Stainless steel
3-place manifold 16842 16842
Stainless steel
6-place manifold 16843 16843
Incubator 220 V, 50 Hz – 18113
** with glass frit filter support
** with PTFE-coated screen for the filter support
These additional accessories can be used
with all filter holders:
16672 Suction flask, 2 l
16623 Rubber vacuum hose, 1m
16611 Water jet pump with G 3/4”
female thread
16612 Laboratory vacuum pump,
220 V, 50 Hz
16615 Laboratory vacuum pump,
110 V, 60 Hz
16692 Vacuum pump, 220 V, 50 Hz
16695 Vacuum pump, 110 V, 60 Hz
17804-M Vacusart
16625 Stainless steel forceps
9. Recommended Accessories
| 21
16306, 16315:
6980115 Glass funnel, 30 ml
6980116 Glass base, 25 mm
6980117 Silicone O-ring, 25 + 3 mm
6983008 Clamp
17148 PTFE ring with glass frit and silicone
O-ring (for 16306)
17149 PTFE ring with PTFE-coated underdrain
screen and support screen including
a silicone O-ring (for 16315)
16306
16315
10. Spare parts (see diagram)
22 |
16307, 16316:
6980119 Glass funnel, 250 ml
6980120 Glass base, 50 mm
6980121 Silicone rubber lid
6980123 Silicone O-ring, 45 + 3 mm
6983006 Glass frit
6983007 PTFE-coated support screen
6983009 Clamp
6983010 Underdrain screen, PTFE-coated
17146 PTFE ring with glass frit and
silicone O-ring (for 16307)
17147 PTFE ring with PTFE-coated underdrain
screen and support screen including
a silicone O-ring (for 16316)
16307
16316
| 23
1. Caractéristiques techniques
2. Etendue de la livraison
3. Nettoyage et entretien de l’appareil de filtration
4. Assemblage de l’appareil de filtration
5. Filtration clarifiante
6. Filtration stérilisante
7. Analyses microbiologiques
8. Déterminations analytiques
9. Accessoires recommandés
10. Pièces de rechange
Les appareils de filtration sous vide en verre existent
toujours en deux versions. Elles se distinguent unique-
ment par le support filtre constitué d’un anneau en
PTFE qui contient soit une fritte de verre ou une tôle
perforée recouvert de PTFE avec grille support. Les
supports filtres ne peuvent être échangés que par unité
complète.
Les appareils à fritte de verre sont utilisés de préférence
pour l’analyse des résidus en raison de la répartition
particulièrement régulière des résidus sur la membrane
filtrante.
Les appareils à tôle perforée recouverts de PTFE sont
essentiellement utilisés pour la filtration clarifiante ou
stérilisante (volumes en litres).
Sommaire
24 |
Matériau : verre de borosilicate 3.3 (DIN-ISO 3585)
Pince : aluminium anodisé
Support filtre: a) verre fritté serti dans un
anneau en PTFE, avec bord de centrage en haut
et joint torique en silicone en bas ou b) tôle perforée
revêtue de PTFE sur une grille support dans un anneau
en PTFE, avec bord de centrage en haut et joint torique
en silicone en bas.
N° d’appareil 16306* 16307*
16315** 16316**
Joint torique 25 + 3 mm 45 + 3 mm
en silicone
Diamètre du filtre 25 mm 50 mm
(ou 24) (ou 47)
Diamètre du préfiltre 20 mm 40 mm
Surface filtrante 3 cm2 12,5 cm2
Capacité 30 ml 250 ml
Tubulure de sortie :
Diamètre extérieur 12 mm 15 mm
Pression de service uniquement uniquement
dépression dépression
Stérilisation Autoclavage jusqu’à 134°C, en
chaleur sèche jusqu’à 180°C
Les conditions à appliquer
sont fonction du filtre à
membrane utilisé.
** avec fritte de verre
** avec tôle perforée recouverts de PTFE
1. Caractéristiques techniques
| 25
Retirez l’appareil de l’emballage et vérifiez
si la livraison est complète en vous aidant de la liste
suivante :
Etendue de la livraison en fig.1
1 couvercle
(uniquement 16307 et 16316) N° 1
1 entonnoir en verre N° 2
1 pince N° 3
1 support filtre à fritte de verre
ou grille support en PTFE et tôle
perforée recouverts de PTFE N° 4
1 joint torique en silicone N° 5
1 partie inférieure en verre N° 6
2. Etendue de la livraison
Fig.1
26 |
Afin d’assurer une longue durée de vie et le bon
fonctionnement de votre appareil, il est nécessaire de le
nettoyer avant la première et après chaque utilisation.
Procédez de la manière suivante :
3.1 Démontez l’appareil en pièces détachées (fig.1).
3.2 Nettoyez toutes les pièces à l’eau chaude avec les dé-
tergents habituels utilisés en laboratoires (pour métal,
verre, matière plastique) et une brosse souple.
3.3 Rincez les pièces à l’eau très chaude puis avec de l’eau
distillée.
3.4 Séchez les pièces à l’air comprimé ou à l’air. N’utilisez
pas de chiffons pour éviter les risques de rayures.
4. Assemblage de l’appareil de filtration et
mise en place de la membrane filtrante
Le montage d’un système de filtration sous vide néces-
site les éléments supplémentaires suivants :
– 1 bouchon (voir accessoires recommandés)
– 1 fiole à vide (16672)
– 1 source de vide (par ex. 16612)
– 1 tuyau à vide (16623)
– 1 flacon de Woulff (16610) ou
1 Vacusart (17804-M)
– 1 pincette pour la manipulation de la membrane
filtrante (fig. 2)
Si vous voulez effectuer de nombreuses analyses de
routine, nous vous recommandons notre rampe à vide
à 3 ou 6 postes avec le nombre correspondant
d’appareils de filtration et d’adaptateurs (voir acces-
soires recommandés).
3. Nettoyage et entretien de l’appareil
de filtration
| 27
4.1 Placez le bouchon correspondant sur la partie inféri-
eure en verre et fixez-la sur la fiole à vide (fig. 3).
4.2 Raccordez la fiole à vide et la source de vide (par ex.
une trompe à eau) à l’aide du tuyau à vide (fig. 4).
Si vous utilisez comme source de vide une pompe
électrique, il faut monter un flacon de Woulff (fig. 5)
ou un Vacusart (17804-M) entre la fiole à vide et la
pompe pour empêcher le débordement de mousse du
filtrat.
Si vous montez un Vacusart, veillez à ce que le filtrat
qui a débordé puisse revenir dans la fiole à vide et ne
demeure pas dans le tuyau.
4.3 Placez le joint torique en silicone sur la face inférieure
du support filtre et la fritte de verre ou la grille support
et la tôle perforée recouverts de PTFE sur la partie supé-
rieure. Introduisez d’abord la grille support avec la face
lisse dirigée vers le haut et enfoncez la tôle perforée
recouverts de PTFE (le bord extérieur dirigé vers le bas)
exactement dans l’évidement prévu à cet effet.
Posez ensuite le support filtre sur la partie inférieure en
verre (fig. 6).
4.4 Retirez la membrane filtrante de l’emballage
à l’aide d’une pincette et centrez-la sur le support
filtre. Si vous utilisez un préfiltre, centrez-le ensuite sur
la membrane filtrante. Le diamètre du préfiltre ne doit
pas excéder les dimensions indiquées en «1. Caractéri-
stiques techniques» (fig. 7).
4.5 Posez l’entonnoir en verre exactement sur la partie
inférieure et fermez les deux parties à l’aide
de la pince de serrage (fig. 8).
28 |
5.1 Assemblez l’appareil de filtration et mettez
la membrane filtrante en place comme décrit en 4.
5.2 Versez le liquide à filtrer dans l’entonnoir en verre
(fig. 9) et mettez la pompe à vide en marche.
Remarque :
Si vous utilisez en plus un préfiltre pour la filtration,
nous vous recommandons de mettre d’abord la pompe
à vide en marche et de verser ensuite le liquide à filtrer
dans l’entonnoir en verre (le préfiltre pourrait sinon
remonter).
5.3 La filtration est achevée lorsqu’il ne reste plus
de liquide sur la membrane filtrante. Coupez le vide
de l’appareil en retirant simplement, sur la trompe à
eau, le tuyau de l’olive de la fiole à vide (fig.10).
Si vous vous servez d’un flacon de Woulff et d’une
pompe à vide, arrêtez la pompe à vide et détendez le
flacon de Woulff (fig.11).
5.4 Vous pouvez alors retirer l’appareil de filtration et son
bouchon de la fiole à vide et transvaser le filtrat ou le
laisser directement dans la fiole à vide.
6. Filtration stérilisante
(possible uniquement avec la tôle perforée recouverts
de PTFE comme support filtre, mais non avec une
fritte de verre)
6.1 Assemblez l’appareil de filtration et mettez la memb-
rane filtrante en place comme décrit en 4, mais sans
raccordement à une source de vide ou à un flacon
de Woulff.
5. Filtration clarifiante
| 29
Les filtres en nylon (Sartolon) doivent toujours
être montés humides.
6.2 Montez un Vacusart (17804-M) sur l’olive de la fiole
à vide à l’aide d’un tuyau à vide court (fig.12).
6.3 Fermez l’entonnoir en verre avec le couvercle
en silicone et du coton ou avec un film en aluminium
(fig.13).
6.4 Stérilisez l’appareil en autoclave pendant
30 minutes à 121°C et 1 bar (cette opération est
réalisable avec toutes les membranes filtrantes Sartorius
Stedim Biotech, à l’exception des filtres en gélatine et
en polyamide). Les membranes filtrantes en acétate de
cellulose, réf. 111.. et en PTFE, réf. 118.. (également
les filtres en fibre de verre réf. 134..) peuvent être
stérilisées alternativement dans l’appareil de filtration à
la chaleur sèche de 180°C pendant plus de 2 heures ou
de 160°C pendant plus de 3 heures (montez le filtre à
l’état sec).
6.5 Après la stérilisation de l’unité de filtration, effectuez
la filtration stérilisante comme une filtration clarifiante.
Respectez les conditions stériles.
7. Analyses microbiologiques
L’analyse microbiologique exige de stériliser l’appareil
de filtration avec le filtre monté (en autoclave pendant
30 minutes à 121°C, ou à la chaleur sèche de 180°C
pendant 2 heures). Effectuez ensuite la filtration,
prélevez la membrane filtrante et incubez-le sur les
milieux de culture correspondants.
8. Déterminations analytiques
Les appareils de filtration en verre équipés de membra-
nes filtrantes conviennent parfaitement par exemple
pour les déterminations gravimétriques,
les tests de particules etc.
30 |
N° de l’appareil de filtration
Désignation 16306* 16307*
de l’article 16315** 16316**
Joint torique en
fluoroélastomère 00118 00124
Bouchon 17174 17175
Adaptateur en acier
inoxydable avec
bouchon pour rampe
en acier inoxydable
à 3 et 6 postes 16836 16837
Rampe en acier
inoxydable à 3 postes 16842 16842
Rampe en acier
inoxydable à 6 postes 16843 16843
Etuve d’incubation
220 V, 50 Hz – 18113
** avec fritte de verre comme support filtre
** avec tôle perforée recouverts de PTFE comme
support filtre
Les autres accessoires sont identiques pour tous
les appareils:
16672 Fiole à vide, 2 litres
16623 Tuyau à vide en caoutchouc, 1 mètre
16611 Trompe à eau, filetage femelle 3/4”
16612 Pompe à vide de laboratoire, 220 V, 50 Hz
16692 Pompe à vide, 220 V, 50 Hz
16610 Flacon de Woulff
17804-M Vacusart
16625 Pince Brucelles en acier inoxydable
9. Accessoires recommandés
| 31
16306, 16315 :
6980115 Entonnoir en verre, 30 ml
6980116 Partie inférieure en verre, 25 mm
6980117 Joint torique en silicone, 25 + 3 mm
6983008 Pince de serrage
17148 Anneau en PTFE avec fritte de verre et
joint torique en silicone (pour 16306)
17149 Anneau en PTFE avec grille support et
tôle perforée revêtues de PTFE ainsi que
joint torique en silicone (pour 16315)
16306
16315
10. Pièces de rechange (voir croquis)
32 |
16307, 16316:
6980119 Entonnoir en verre, 250 ml
6980120 Partie inférieure en verre, 50 mm
6980121 Couvercle en caoutchouc de silicone
6980123 Joint torique en silicone, 45 + 3 mm
6983006 Fritte de verre
6983007 Tôle perforée recouverts de PTFE
6983009 Pince de serrage
6983010 Grille support recouverts de PTFE
17146 Anneau en PTFE avec fritte de verre et joint
torique en silicone (pour 16307)
17147 Anneau en PTFE avec grille support et tôle
perforée revêtues de PTFE ainsi que joint
torique en silicone (pour 16316)
16307
16316
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1. Datos técnicos
2. Equipo suministrado
3. Limpieza y mantenimiento del aparato de filtración
4. Montaje del aparato de filtración
5. Filtración clara
6. Filtración estéril
7. Análisis microbiológicos
8. Determinaciones analíticas
9. Accesorios recomendables
10. Repuestos
Los aparatos de filtración al vacío de vidrio se
encuentran disponibles en dos diseños diferentes.
Estos modelos se diferencian solamente por los
soportes del filtro, los cuales están compuestos de
un anillo de PTFE, el cual puede contener o una frita
de vidrio o una chapa perforada de acero inoxidable
revestidos con PTFE con un tamiz de soporte.
Los soportes del filtro se pueden cambiar solamente
como unidad completa.
Los aparatos con frita de vidrio se utilizan primordial-
mente para los análisis residuales, debido a la repartici-
ón muy simétrica de los residuos sobre la superficie
del filtro de membrana.
Los aparatos con chapa perforada de acero inoxidable
revestida con PTFE se emplean principal mente para las
filtraciones clara o estéril (de 1 litro de volumen).
Contenido
34 |
Material: Vidrio de borosilicato 3.3 (DIN-ISO 3585)
Abrazadera: Aluminio anodizado
Soporte del filtro: a) Frita de vidrio sinterizado
en un anillo de PTFE, con borde de centraje en la parte
superior y anillo O de silicona en la parte inferior,
o bien
b) Chapa perforada de acero inoxidable revestida con
PTFE sobre un tamiz de soporte en un anillo de PTFE,
con borde de centraje en la parte superior y anillo
O de silicona en la parte inferior.
Aparato N°. 16306* 16307*
16315** 16316**
Anillo O de silicona 25 + 3 mm 45 + 3 mm
Diámetro del filtro 25 mm 50 mm
(ó 24) (ó 47)
Diámetro del prefiltro 20 mm 40 mm
Area de filtración 3 cm2 12,5 cm2
Capacidad 30 ml 250 ml
Conexiones:
Diámetro exterior
de la salida 12 mm 15 mm
Presión de trabajo sólo vacío sólo vacío
Esterilización Autoclave hasta 134°C,
aire caliente hasta 180°C.
Las condiciones a reali zarse
dependen del filtro de mem-
brana empleado.
** con frita de vidrio
** con chapa perforada de acero inoxidable
revestida con PTFE
1. Datos técnicos
| 35
Desempaque el aparato y compruebe si el equipo sumi-
nistrado está completo, con ayuda de la siguiente lista:
Equipo suministrado En la figura 1
1 tapa (sólo para 16307 y 16316) N° 1
1 embudo de vidrio N° 2
1 abrazadera N° 3
1 soporte del filtro con frita de vidrio,
o bien, tamiz de soporte con PTFE
y chapa perforada de acero
inoxidable con PTFE N° 4
1 anillo O de silicón N° 5
1 base de vidrio N° 6
2. Equipo suministrado
Fig.1
36 |
Para garantizar que su aparato le dure mucho tiempo
en perfecto estado de funcionamiento, es necesario
limpiar el aparato antes de utilizarlo por primera vez y
después de cada uso.
Para realizar la limpieza, proceda de la siguiente
manera:
3.1 Desmonte el aparato completamente (fig.1).
3.2 Lave todas las partes con agua caliente, haciendo uso
de un cepillo de cerdas suaves y un detergente comer-
cial para laboratorio (para metales, vidrio, plástico).
3.3 Lave primero todas las partes con agua caliente
y después con agua destilada.
3.4 Seque todas las partes con aire comprimido
o póngalas a secar al aire. No utilice paños para secar,
ya que estos pueden dejar fibras en el aparato.
4. Montaje del aparato y colocación del
filtro de membrana
Para el montaje de un sistema de filtración al vacío,
Ud. necesita además:
– 1 tapón (vea los accesorios recomendados)
– 1 frasco de succión (16672)
– 1 fuente de vacío (p. ej., 16612)
– 1 manguera para vacío (16623)
– 1 frasco de Woulff (16610), o bien,
– 1 Vacusart (17804-M)
– 1 pinza para el manejo de los filtros de membrana
(fig. 2)
Si Ud. desea realizar una gran cantidad de análisis
rutinarios, recomendamos nuestro dispositivo de succi-
ón de 3 ó de 6 plazas con la cantidad correspondiente
de aparatos de filtración y piezas de conexión (vea los
accesorios recomendados).
3. Limpieza y cuidado del aparato
de filtración
| 37
4.1 Coloque a la base de vidrio su tapón corres pondiente
e instale esta base sobre el frasco de succión (fig. 3)
4.2 Con ayuda de la manguera para vacío realice la cone-
xión entre el frasco de succión y la fuente de vacío (p.
ej., una trompa de agua) (fig. 4).
Si se utiliza una bomba eléctrica como fuente de vacío,
tiene que conectarse un frasco de Woullf (fig. 5) entre
el frasco de succión y la bomba, como medida de
protección contra derrames de la solución a filtrar,
o debe utilizarse el Vacusart (17804-M).
Al instalar el Vacusart, ponga atención en que el
filtrado derramado regrese al frasco de succión y no se
quede en la manguera.
4.3 Coloque sobre la parte inferior del soporte del filtro
un anillo O de silicona y sobre la parte superior,
coloque la frita de vidrio, o bien, el tamiz de soporte y
la chapa perforada de acero inoxidable revestidos con
PTFE.
Coloque primero el tamiz de soporte con la parte lisa
hacia arriba y oprima la chapa perforada de acero ino-
xidable con PTFE (el borde exterior debe quedar hacia
arriba), haciéndola encajar exactamente en la abertura
dispuesta para este fin.
A continuación, coloque el soporte del filtro sobre
la base de vidrio (fig. 6).
4.4 Utilizando una pinza, saque el filtro de membrana
de su empaque y colóquelo en el centro del soporte
del filtro.
Si Ud. utiliza un prefiltro, coloque después éste sobre
el centro del filtro de membrana.
El diámetro del prefiltro no debe sobrepasar las medi-
das que se indican en «1. Datos técnicos». (fig. 7).
4.5 Coloque el embudo de vidrio sobre la base y cierre
ambas partes con la abrazadera (fig. 8).
38 |
5. Monte el aparato de filtración y coloque el filtro
de membrana, como se describe bajo el punto 4.
5.2 Llene el embudo de vidrio con el líquido a filtrar
(fig. 9) y encienda la bomba de vacío.
Nota importante:
Si Ud. emplea además un prefiltro para realizar la fil-
tración, recomendamos encender primero la bomba
de vacío y después echar el líquido a filtrar en el
embudo de vidrio (de no hacerse así, el prefiltro podría
flotar hacia arriba).
5.3 La filtración ha terminado cuando ya no hay líquido
sobre el filtro de membrana. Quite el vacío del aparato
sacando simplemente la manguera del niple del frasco
de succión, si utilliza una bomba de chorro de agua
(fig.10).
Si Ud. utiliza el frasco de Woulff y la bomba de vacío,
apague la bomba y haga la distensión del sistema por
medio del frasco de Woulff (fig.11).
5.4 Ahora Ud. puede retirar el aparato de filtración con
tapón colocado del frasco de succión y puede transfe-
rir el filtrado a otro recipiente o éste puede quedarse
directamente en el frasco de succión.
6. Filtración estéril
(sólo con la chapa perforada de acero inoxidable reve-
stida con PTFE como soporte del filtro y no con la frita
de vidrio).
6.1 Monte el aparato y coloque el filtro de membrana
como se describe bajo el punto 4, pero sin conectar la
fuente de vacío o la botella de Woulff.
5. Filtración clara
| 39
Los filtros de nylon (Sartolon) tienen que humedecerse
antes de colocarse.
6.2 Coloque un Vacusart (17804-M) en el niple
del frasco de succión con ayuda de una manguera de
vacío corta (fig.12).
6.3 Cierre el embudo de vidrio con la tapa
de silicón y algodón o con una lámina de aluminio
(fig.13).
6.4 Autoclave el aparato de filtración a 121°C y 1 bar
durante 30 minutos (esto puede realizarse con todos
los filtros de membrana de Sartorius Stedim Biotech,
a excepción de los filtros de gelatina y los filtros de
membrana de poliamida).
Los filtros de membrana de acetato de celulosa, N° de
pedido 111... y de PTFE, N° 118.. (así mismo los filtros
de fibra de vidrio, N° 134..) pueden ser esterilizados
en forma alternativa en el aparato de filtración con
calor seco a 180°C durante 2 horas o a 160°C durante
3 horas (los filtros tienen que colocarse cuando están
secos).
6.5 Después de la esterilización de la unidad de filtración
lleve a cabo la filtración estéril de igual manera cómo
se realiza una filtración clara.
Aténgase a las indicaciones acerca de la esterilidad.
7. Análisis microbiológicos
Para los análisis microbiológicos es necesario esterilizar
el aparato de filtración con el filtro colocado (autoclave
a 121°C durante 30 minutos o en calor seco a 180°C
durante 2 horas). A continuación, realice la filtración,
retire el filtro de membrana e incúbelo en medios
de cultivo apropiados.
8. Determinaciones analíticas
Los aparatos de filtración de vidrio utilizados con
filtros de membrana son muy apropiados para las
determinaciones gravimétricas, pruebas de
partículas, etc.
40 |
N° de aparato de filtración
Denominación del 16306* 16307*
artículo 16315** 16316**
Anillo O de
fluoroelastómeros 00118 00124
Tapones 17174 17175
Adaptador de acero inoxi-
dable con tapón para
colocación sobre los
mecanismos de succión
con 3 y 6 plazas 16836 16837
Mecanismo de succión
de acero inoxidable
con 3 plazas 16842 16842
Mecanismo de succión
de acero inoxidable
con 6 plazas 16843 16843
Incubadora,
220 V, 50 Hz – 18113
** con frita de vidrio como soporte del filtro
** con chapa perforada de acero inoxidable revestida
con PTFE como soporte del filtro
Los accesorios siguientes se pueden utilizar con todos
los aparatos de filtración:
16672 Frasco de succión de 2 litros.
16623 Manguera de goma para vacío de 1 m.
16611 Trompa de agua con rosca hembra de 3/4”.
16612 Bomba de vacío para laboratorio,
220 V, 50 Hz.
16692 Bomba de vacío, 220 V, 50 Hz
16610 Frasco de Woulff
17804-M Vacusart
16625 Pinzas de acero inoxidable
9. Accesorios recomendables
| 41
16306, 16315:
6980115 Embudo de vidrio de 30 ml
6980116 Base de vidrio de 25 mm
6980117 Anillo O de silicona de 25 + 3 mm
6983008 Abrazadera
17148 Anillo de PTFE con frita de vidrio y anillo
O de silicona (para 16306)
17149 Anillo de PTFE con tamiz de soporte y
chapa perforada de acero inoxidable
revestidos de PTFE, incluyendo un anillo
O de silicona (para 16315)
16306
16315
10. Repuestos
(vea la ilustración)
42 |
16307, 16316:
6980119 Embudo de vidrio de 250 ml.
6980120 Base de vidrio de 50 mm.
6980121 Tapa de caucho de silicona.
6980123 Anillo O de silicona, 45 + 3 mm
6983006 Frita de vidrio
6983007 Chapa perforada de acero inoxidable
revestida con PTFE
6983009 Abrazadera
6983010 Tamiz de soporte, con recubrimiento
de PTFE
17146 Anillo de PTFE con frita de vidrio y anillo
O de silicona (sólo para 16307)
17147 Anillo de PTFE con tamiz de soporte
y chapa perforada de acero inoxidable
revestidos con PTFE, incluyendo un anillo
O de silicona (sólo para 16316)
16307
16316
| 43
1. Specifiche
2. Equipaggiamento fornito
3. Pulizia e manutenzione del portafiltro
4. Assemblaggio del portafiltro
5. Filtrazione chiarificante
6. Filtrazione sterilizzante
7. Analisi microbiologiche
8. Determinazioni analitiche
9. Accessori raccomandati
10. Parti di ricambio
I dispositivi in vetro per la filtrazione sotto vuoto
sono disponibili in due tipi. Differiscono solamente
per il tipo di supporto della membrana, costituito da
un anello in PTFE contenente un supporto di vetro
sinterizzato oppure un disco forato in acciaio inox
rivestito di PTFE ed un disco di drenaggio. I supporti
della membrana possono essere cambiati solo
come unità.
I dispositivi con il supporto in vetro sinterizzato
sono da preferire per l’analisi dei residui data la spe-
ciale distribuzione uniforme dei residui, sulla superficie
filtrante. I dispositivi con il supporto con disco forato
rivestito in PTFE sono invece usati per la filtrazione
sterilizzante e chiarificante di piccoli volumi di liquidi.
Indice
44 |
Materiali: Vetro borosilicato (3.3 DIN-ISO 3585)
Pinza: Alluminio anodizzato
Supporto della membrana: a) Anello in PTFE con un
supporto in vetro sinterizzato con all’estremità superi-
ore un bordo rialzato per centrare e all’estremità infe-
riore un O-ring in silicone oppure b) un anello in PTFE
con disco forato in acciaio inox rivestito in PTFE e un
disco di drenaggio. L’anello ha all’estremità superiore
un bordo rialzato per centrare e all’estremità inferiore
un O-ring in silicone.
N° dell’apparecchio 16306* 16307*
16315** 16316**
O-ring in silicone 25 + 3 mm 45 + 3 mm
Diametro della 25 mm 50 mm
membrana (o 24) (o 47)
Diametro del prefiltro 20 mm 40 mm
Superficie filtrante 3 cm2 12,5 cm2
Capacità del recipiente 30 ml 250 ml
Attacco in uscita:
diametro esterno 12 mm 15 mm
Massima solo sotto solo sotto
pressione vuoto vuoto
Sterilizzazione In autoclave fino a 134°C,
calore secco fino a 180°C.
Le condizioni per la steriliz-
zazione dipendono dal tipo di
membrana usata.
** con supporto in vetro sinterizzato
** con un disco forato rivestito in PTFE
1. Specifiche
| 45
Togliete l’apparecchio dalla confezione e controllate
con l’aiuto della seguente lista se tutte le parti sono
state fornite:
Equipaggiamento fornito Foto nr.
1 Coperchio (solo 16307 e 16316) Nr. 1
1 Recipiente superiore Nr. 2
1 Pinza Nr. 3
1 Supporto della membrana con supporto
in vetro sinterizzato o disco di supporto
rivestito in PTFE e disco di drenaggio
in PTFE Nr. 4
1 O-ring in silicone Nr. 5
1 Base in vetro Nr. 6
2. Equipaggiamento fornito
Fig.1
46 |
Per garantire una lunga durata ed efficienza del
portafiltro, è necessario pulirlo prima dell’uso iniziale
e dopo ogni filtrazione.
Procedete nel modo seguente:
3.1 Smontate il portafiltro nelle sue parti singole
(vedi fig.1).
3.2 Con l’aiuto di una spazzola morbida, pulite tutte le
parti con acqua calda e con un detergente di labo-
ratorio disponibile in commercio (per metalli, vetro,
plastica).
3.2 Sciacquate tutte le parti prima con acqua calda e poi
con acqua distillata.
3.4 Asciugate le parti con aria compressa oppure lasciate
che si asciughino da sè. Non usate panni
o canovacci, potrebbero lasciare dei residui di fibra sul
portafiltro.
4. Assemblaggio del portafiltro
e posizionamento della membrana fil-
trante
Per l’assemblaggio del sistema per filtrazione sotto vu-
oto, sono necessari i seguenti accessori supplementari:
– 1 Tappo (vedi «Accessori raccomandati»)
– 1 Beuta da vuoto (16672)
– 1 Fonte di vuoto (ad es., 16612)
– 1 Tubo da vuoto (16623)
– 1 Bottiglia di Woulff (16610) o
– 1 Vacusart (17804-M)
– 1 Pinzetta per il posizionamento della membrana
filtrante (Fig.2)
Nel caso si debbano eseguire numerosi test di routine,
Vi consigliamo l’uso dei nostri collettori a 3 o a 6 posti
con il numero corrispondente dei portafiltri e attacchi.
(vedi «Accessori raccomandati»).
3. Pulizia e manutenzione
dell’apparecchio per filtrazione
| 47
4.1 Mettete il tappo appropriato sulla base di vetro ed
inseritela nella beuta da vuoto. (Fig. 3).
4.2 Usando un tubo da vuoto, collegate la beuta alla fonte
di vuoto (ad es. una pompa da vuoto ad acqua) (fig. 4).
Se usate una pompa elettrica come fonte di vuoto, do-
vete connettere una bottiglia di Woulff o un Vacusart
tra la beuta e la pompa, in modo da prevenire che del
filtrato trabocchi ed entri nella pompa (fig. 5).
Quando si monta il Vacusart bisogna fare attenzione
che il filtrato traboccato possa ritornare nella beuta
e non rimanga nel tubo.
4.3 Ponete l’O-ring in silicone sulla parte sotto del sup-
porto della membrana e sulla parte sopra il supporto
in vetro sinterizzato, il disco di drenaggio e il disco di
supporto rivestito in PTFE. Per far ciò, mettete il disco
di drenaggio con la parte liscia rivolta verso l’alto e
premete il disco di supporto rivestito in PTFE con il
bordo esterno verso il basso in modo che entri esat-
tamente nella dentellatura. Poi ponete il supporto del
filtro sulla base in vetro (Fig. 6).
4.4 Con l’aiuto di una pinzetta, togliete il filtro a
membrana dalla confezione e lo centrate sul supporto
del filtro.
Se, per una particolare procedura di filtrazione è
richiesto il prefiltro, lo centrate semplicemente sopra
il filtro a membrana. Il diametro del prefiltro non deve
superare le dimensioni riportate nel paragrafo
«Specifiche» (Fig. 7).
4.5 Mettete il recipiente superiore sopra la base assembla-
ta con il supporto del filtro in modo che combacino
esattamente e assicurate entrambe le parti bloccandole
con la pinza.
48 |
5.1 Assemblate il portafiltro e posizionate il filtro
a membrana come descritto nel punto 4.
5.2 Versate il liquido da filtrare nel recipiente
superiore (fig. 9) e accendete la pompa da vuoto.
Nota importante:
Se usate per la filtrazione anche un prefiltro,
Vi consigliamo di accendere prima la pompa da vuoto
e poi versare il liquido da filtrare nel recipiente supe-
riore (altrimenti il prefiltro potrebbe galleggiare verso
l’alto).
5.3 La filtrazione è conclusa quando tutto il liquido è pas-
sato attraverso il filtro a membrana. A questo punto,
staccate la fonte di vuoto dall’apparecchio.
Se usate una pompa da vuoto ad acqua, staccate sem-
plicemente il tubo dall’attacco della beuta
da vuoto (Fig.10).
Se lavorate con la bottiglia di Woulff e la pompa da
vuoto, spegnete la pompa e riducete la pressione nella
bottiglia di Woulff (Fig.11).
5.4 A questo punto, il porta filtro con il tappo può essere
tolto dalla beuta da vuoto; il filtrato può essere trasfe-
rito o lasciato direttamente nella beuta di aspirazione.
6. Filtrazione sterilizzante
(solo con il supporto del filtro e con il disco rivestito in
PTFE, senza il supporto in vetro sinterizzato)
6.1 Per assemblare il portafiltro e inserire il filtro
a membrana seguite le istruzioni descritte al punto 4;
comunque non collegate il portafiltro ad una fonte
di vuoto o ad una bottiglia di Woulff.
5. Filtrazione chiarificante
| 49
Avvertenza:
Bagnate i filtri in nitrato di cellulosa prima di metterli
sui portafiltri bagnati. Se il portafiltro è secco, anche
i filtri in nitrato di cellulosa devono essere secchi.
E’ importante bagnare sempre i filtri in acetato di cel-
lulosa e i filtri in nylon (Sartolon) prima di metterli sul
portafiltro.
6.2 Usate un tubo da vuoto corto per unire un Vacusart
(17804-M) all’attacco della beuta da vuoto (Fig.12).
6.3 Chiudete il recipiente con un coperchio in silicone e
cotone o con un foglio d’alluminio (Fig.13).
6.4 Autoclavate l’apparecchio a 121°C e a 1 bar per
30 minuti. (Tutti i filtri a membrana Sartorius Stedim
Biotech possono essere sterilizzati in autoclave ad
eccezione dei filtri in gelatina in poliammide).
Per i filtri a membrana in acetato di cellulosa (111...),
in PTFE (118...) e i filtri in fibra di vetro (134...), come
procedura alternativa di sterilizzazione, si può usare
il calore a secco a 160°C per 3 ore o a 180°C per 2 ore.
(Non bagnare i filtri prima di metterli sui portafiltri).
6.5 Dopo aver sterilizzato l’unità del portafiltro,
procedete con l’operazione di sterilizzazione secondo
le indicazioni date per la sterilizzazione chiarificante.
Rispettate le consuete precauzioni per evitare la conta-
minazione.
7. Analisi microbiologiche
Per l’analisi microbiologica, è necessario sterilizzare
il portafiltro contenente il filtro a membrana (autocla-
vare a 121°C per 30 minuti oppure usare il calore secco
a 180°C per 2 ore). Dopo la sterilizzazione, procedete
con l’operazione di filtrazione, poi rimuovete il filtro
a membrana e lo incubate nel medium nutriente richie-
sto.
8. Determinazioni analitiche
I portafiltri sotto vuoto Sartorius Stedim Biotech sono
particolarmente indicati per effettuare determinazioni
analitiche, per es. determinazioni gravimetriche, analisi
delle particelle, ecc.
50 |
N° dell’apparecchio
di filtrazione
Designazione 16306* 16307*
16315** 16316**
O-ring in elastomero
fluorurato 00118 00124
Tappi in gomma 17174 17175
Adattatore in acciaio
inox con tappi per
collettore in acciaio
inox a 3 e 6 posti 16836 16837
Collettore in acciaio
inox a 3 posti 16842 16842
Collettore in acciaio
inox a 6 posti 16843 16843
Stufa incubatrice,
220 V, 50 Hz – 18113
** con supporto del filtro in vetro sinterizzato
** con un disco forato rivestito in PTFE per il supporto
del filtro
Questi accessori supplementari possono essere usati
con tutti i portafiltri:
1. Pompe:
16672 Beuta da vuoto da 2 litri
16623 Tubo in gomma, 1 m
16611 Pompa da vuoto ad acqua con filetto fem-
mina 3/4”
16612 Pompa da vuoto da laboratorio,
220 V, 50 Hz
16692 Pompa da vuoto , 220 V, 50 Hz
16610 Bottiglia di Woulff
17804-M Vacusart
16625 Pinzetta in acciaio inox
9. Accessori raccomandati
| 51
16306, 16315:
6980115 Recipiente superiore, 30 ml
6980116 Base in vetro, 25 mm
6980117 O-ring in silicone, 25 + 3 mm
6983008 Pinza
17148 Anello in PTFE completo di supporto in
vetro sinterizzato e O-ring in silicone
17149 Anello in PTFE con disco forato e disco
di drenaggio rivestiti con PTFE e O-ring
in silicone (per 16316)
16306
16315
10. Parti di ricambio
(ved. schema):
52 |
16307, 16316:
6980119 Recipiente superiore, 250 ml
6980120 Base in vetro, 50 mm
6980121 Coperchio in gomma di silicone
6980123 O-ring in silicone, 45 + 3 mm
6983006 Supporto in vetro sinterizzato
6983007 Disco forato rivestito in PTFE
6983009 Pinza
6983010 Disco di drenaggio rivestito in PTFE
17146 Anello in PTFE completo di supporto in
vetro sinterizzato e O-ring in silicone
(16307)
17147 Anello in PTFE con disco forato e disco
di drenaggio rivestiti con PTFE e O-ring
in silicone (per 16316)
16307
16316
Sartorius Stedim Biotech GmbH
August-Spindler-Strasse 11
37079 Goettingen, Germany
www.sartorius-stedim.com
Copyright by Sartorius Stedim
Biotech GmbH, Goettingen,
Germany.
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reprinted or translated in any
form or by any means without
the prior written permission
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GmbH. The status of the
information, specifications
and illustrations in this
manual is indicated by the
date given below.
Sartorius Stedim Biotech GmbH
reserves the right to make
changes to the technology,
features, specifications and
design of the equipment
without notice.
Status:
May 2014,
Sartorius Stedim Biotech GmbH,
Goettingen, Germany
Printed in the EU on paper bleached
without chlorine. | W
Publication No.: SL-6001-p140509
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Sartorius Stedim 16316 Directions For Use Manual
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