Sartorius Stedim 16315 Directions For Use Manual

Marca: Sartorius Stedim

Modelo: 16315

Tipo: Directions For Use Manual

Este manual también es adecuado para

16316

16306, 16307, 16315, 16316

Bedienungsanleitung

Glas-Vakuumfiltrationsgeräte

Directions for Use

Glass Vacuum Filter Holders

Mode d’emploi

des appareils de filtration sous vide en verre

Instrucciones para el uso

de los aparatos de filtración al vacío de vidrio

Istruzioni per l’uso

di apparecchi in vetro per filtrazione sottovuoto

80123-000-50

2 |

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| 3

1. Technische Daten

2. Lieferumfang

3. Reinigen und Pflegen des Filtrationsgerätes

4. Zusammensetzen des Filtrationsgerätes

5. Klarfiltration

6. Sterilfiltration

7. Mikrobiologische Untersuchungen

8. Analytische Bestimmungen

9. Empfehlenswertes Zubehör

10. Ersatzteile

Glas-Vakuumfiltrationsgeräte sind jeweils in zwei

Ausführungen erhältlich. Sie unterscheiden sich ledig-

lich durch die Filterunterstützung, die aus einem

PTFE-Ring besteht, der entweder eine Glasfritte oder

ein PTFE-beschichtetes Lochblech mit Stützsieb

enthält.

Die Filterunterstützung sind nur als Einheit

austauschbar.

Die Geräte mit Glasfritte werden wegen der besonders

gleichmäßigen Verteilung des Rückstandes auf der

Membranfilteroberfläche bevorzugt für die Rückstands-

analyse eingesetzt.

Die Geräte mit PTFE-beschichtetem Lochblech

werden hauptsächlich für die Klar- oder Sterilfiltration

(Litervolumina) eingesetzt.

Inhaltsverzeichnis

4 |

Material: Borosilicatglas 3.3 (DIN-ISO 3585)

Klammer: Eloxiertes Aluminium

Filterunterstützung: a) Glassinterfritte im PTFE-Ring,

mit Zentrierrand oben und Silikon-O-Ring unten oder

b) PTFE-beschichtetes Lochblech auf einem Stützsieb

im PTFE-Ring, mit Zentrierrand oben und Silikon-

O-Ring unten.

Geräte Nr. 16306* 16307*

16315** 16316**

Silikon-O-Ring 25 + 3 mm 45 + 3 mm

Filterdurchmesser 25 mm 50 mm

(oder 24) (oder 47)

Vorfilterdurchmesser 20 mm 40 mm

Filtrationsfläche 3 cm2 12,5 cm2

Fassungsvermögen 30 ml 250 ml

Auslaufstutzen:

Außendurchmesser 12 mm 15 mm

Betriebsdruck nur Unterdruck nur Unterdruck

Sterilisation Autoklavieren bis 134° C,

Trockenhitze bis 180° C

Die zu verwendenden Bedingun-

gen sind von dem eingesetzten

Membranfilter abhängig.

** mit Glasfritte

** mit PTFE-Lochblech

1. Technische Daten

| 5

Entnehmen Sie das Gerät der Verpackung und

überprüfen Sie mit Hilfe der folgenden Liste die

Vollständigkeit der Lieferung:

Lieferumfang In Abb. 1

1 Deckel (nur 16307 und 16316) Nr. 1

1 Glasaufsatz Nr. 2

1 Klammer Nr. 3

1 Filterunterstützung mit Glasfritte

bzw. PTFE-Stützsieb u. PTFE-Lochblech Nr. 4

1 Silikon-O-Ring Nr. 5

1 Glasunterteil Nr. 6

2. Lieferumfang

Abb.1

6 |

Um eine lange Lebensdauer und Funktionstüchtig-

keit zu gewährleisten, ist es notwendig, das Gerät vor

dem ersten Gebrauch und nach jeder Benutzung zu

reinigen.

Gehen Sie so vor:

3.1 Zerlegen Sie das Gerät in seine Einzelteile (Abb.1).

3.2 Säubern Sie alle Teile mit warmen Wasser und

handelsüblichen Laborreinigungsmitteln (für Metall,

Glas, Kunststoff) und weichen Bürsten.

3.3 Spülen Sie die Teile mit heißen Wasser und danach

mit dest. Wasser ab.

3.4 Trocknen Sie die Teile im Preßluftstrom oder

an der Luft. Keine Verwendung von Tüchern,

wegen evtl. Faserabgabe.

4. Zusammensetzen des Filtrationsgerätes

und Einlegen des Membranfilters

Für den Aufbau eines Vakuumfiltrationsystems

benötigen Sie zusätzlich:

– 1 Stopfen (siehe Empfehlenswertes Zubehör)

– 1 Saugflasche (16672)

– 1 Vakuumquelle (z.B. 16612)

– Vakuumschlauch (16623)

– 1 Woulff’sche Flasche (16610) bzw. 1 Vacusart

(17804-M)

– 1 Pinzette für die Handhabung der Membranfilter

(Abb. 2).

Falls Sie große Mengen an Routineuntersuchungen

durchführen wollen, empfehlen wir Ihnen unsere

3- oder 6-fache Absaugvorrichtung mit der

entsprechen den Anzahl an Filtrationsgeräten und

Verbindungs stücken (siehe Empfehlenswertes Zubehör).

3. Reinigen und Pflegen des

Filtrations gerätes

| 7

4.1 Versehen Sie das Glasunterteil mit dem entsprechen den

Stopfen und setzen Sie es auf die Saugflasche

(Abb. 3).

4.2 Stellen Sie mit Hilfe des Vakuumschlauchs die

Verbindung zwischen Saugflasche und Vakuumquelle

(z.B. eine Wasserstrahlpumpe) her (Abb. 4).

Wird als Vakuumquelle eine elektrische Pumpe

einge setzt, so muß zum Schutz vor überschäu-

mendem Filtrat zwischen Saugflasche und Pumpe eine

Woulff’sche Flasche (Abb. 5) oder ein Vacusart (17804-

M) eingesetzt werden. Beim Einbau des Vacusart ist

darauf zu achten, daß das übergetretene Filtrat in die

Saugflasche zurück laufen kann und nicht im Schlauch

stehenbleibt.

4.3 Versehen Sie die Filterunterstützung auf der Unterseite

mit dem Silikon-O-Ring und auf der Ober seite mit der

Glasfritte bzw. dem Stützsieb und dem PTFE-beschich-

teten Lochblech. Legen Sie zunächst das Stütz sieb mit

der glatten Seite nach oben ein und drücken Sie das

PTFE-Lochblech (der Außenrand zeigt nach unten)

paßgenau in die dafür vorgesehene Vertiefung.

Dann legen Sie die Filterunterstützung auf das Glas-

unterteil (Abb. 6).

4.4 Nehmen Sie das Membranfilter mit Hilfe einer Pinzette

aus der Verpackung und legen Sie es zentrisch auf die

Filterunterstützung.

Bei Verwendung eines Vorfilters legen Sie dieses dann

anschließend zentrisch auf das Membranfilter.

Der Durchmesser des Vorfilters darf die unter

»1. Technische Daten« angegebenen Maße nicht

überschreiten. (Abb.7)

4.5 Setzen Sie den Glasaufsatz paßgenau auf das

Unterteil und verschließen Sie beide Teile mittels

der Verschlußklammer (Abb. 8).

8 |

5.1 Zusammensetzen des Filtrationsgerätes und Einlegen

des Membranfilters wie unter 4. beschrieben.

5.2 Füllen Sie die zu filtrierende Flüssigkeit

in den Glasaufsatz (Abb. 9) und schalten Sie die

Vakuumpumpe ein.

Hinweis:

Wenn Sie für die Filtration zusätzlich ein Vorfilter ver-

wenden, empfehlen wir erst die Vakuumpumpe einzu-

schalten und dann die zu filtrierende Flüssigkeit in den

Glasaufsatz zu füllen (sonst könnte das Vorfilter nach

oben schwimmen).

5.3 Die Filtration ist beendet, wenn keine Flüssigkeit mehr

auf dem Membranfilter steht. Nehmen Sie das Vakuum

vom Gerät, indem Sie bei einer Wasserstrahl pumpe

einfach den Schlauch von der Olive der Saugflasche

abziehen (Abb.10).

Bei Arbeiten mit Woulff’scher Flasche und Vakuum-

pumpe, schalten Sie die Pumpe ab und entspannen die

Woulff’sche Flasche (Abb.11).

5.4 Nun können Sie das Filtrationsgerät mit Stopfen von

der Saugflasche nehmen und das Filtrat umfüllen oder

auch direkt in der Saugflasche belassen.

6. Sterilfiltration

(nur mit PTFE-beschichteten Lochblech als Filterunter-

stützung möglich, nicht mit Glasfritte)

6.1 Zusammensetzen des Gerätes und Einlegen des

Membranfilters wie unter 4. beschrieben, jedoch ohne

Anschluß an eine Vakuumquelle bzw. Woulff’sche

Flasche.

5. Klarfiltration

| 9

Nylonfilter (Sartolon) sind grundsätzlich naß

einzulegen.

6.2 Versehen Sie die Olive der Saugflasche mit Hilfe eines

kurzen Vakuumschlauchs mit einem Vacusart (17804-

M) (Abb.12).

6.3 Verschließen Sie den Glasaufsatz mit dem Silikondeckel

und Watte oder mit Alu-Folie (Abb.13).

6.4 Das Gerät wird bei 121° C und 1 bar 30 Minu ten

autoklaviert (dies ist mit allen entsprechenden Sarto-

rius Stedim Biotech Membranfiltern durchzuführen,

ausgenom men Gelatine und Polyamid-Membranfilter).

Membranfilter aus Celluloseacetat 111.. und aus PTFE

118.. (ebenso die Glasfaserfilter 134..) können alter-

nativ im Filtrationsgerät mit Trockenhitze von 180° C

über

2 Stunden oder 160° C über 3 Stunden sterilisiert

werden (Filter trocken einlegen).

6.5 Nach dem Sterilisieren der Filtrationseinheit führen

Sie die Sterilfiltration wie eine Klarfiltration durch.

Beachten Sie sterile Bedingungen.

7. Mikrobiologische Untersuchungen

Für die mikrobiologische Untersuchung ist es erforder-

lich, das Filtrationsgerät mit eingelegtem

Filter zu sterilisieren (autoklavieren 121° C, 30 Minuten

oder Trockenhitze 180° C, 2 Std.). Anschließend führen

Sie die Filtration durch, entnehmen das Membranfilter

und inkubieren es auf entsprechenden Nährmedien.

8. Analytische Bestimmungen

Die Glasfiltrationsgeräte eignen sich in Verbindung

mit Membranfiltern sehr gut für z.B. gravimetrische

Bestimmungen, Partikeltests etc.

10 |

Filtrationsgerät Nr.

Artikelbezeichnung 16306* 16307*

16315** 16316**

Fluorelastomer-O-ring 00118 00124

Stopfen 17174 17175

Edelstahladapter mit Stopfen

für Edelstahlabsaug-

vorrichtung, 3fach und 6fach 16836 16837

Edelstahlabsaugvorrichtung,

3fach 16842 16842

Edelstahlabsaugvorrichtung,

6fach 16843 16843

Brutschrank 220 V, 50 Hz – 18113

** mit Glasfritte als Filterunterstützung

** Mit PTFE-Lochblech als Filterunterstützung

Das weitere Zubehör ist für alle Geräte gleich:

16672 Saugflasche, 2 l

16623 Gummi-Vakuumschlauch, 1 m

16611 Wasserstrahlpumpe

mit G3/4 Innengewinde

16612 Laborvakuumpumpe, 220 V, 50 Hz

16692 Vakuumpumpe, 220 V, 50 Hz

16610 Woulff’sche Flasche

17804-M Vacusart

16625 Edelstahlpinzette

9. Empfehlenswertes Zubehör

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16306, 16315:

6980115 Glasaufsatz, 30 ml

6980116 Glasunterteil, 25 mm

6980117 Silikon-O-Ring, 25 + 3 mm

6983008 Verschlußklammer

17148 PTFE-Ring mit Glasfritte und

Silikon-O-Ring (für 16306)

17149 PTFE-Ring mit PTFE-beschichtetem

Stützsieb und Lochblech sowie

Silikon-O-Ring (für 16315)

16306

16315

10. Ersatzteile

(siehe Zeichnung)

12 |

16307, 16316:

6980119 Glasaufsatz, 250 ml

6980120 Glasunterteil, 50 mm

6980121 Deckel aus Silikonkautschuk

6980123 Silikon-O-Ring, 45 + 3 mm

6983006 Glasfritte

6983007 PTFE-Lochblech

6983009 Verschlußklammer

6983010 Stützsieb, PTFE-beschichtet

17146 PTFE-Ring mit Glasfritte und

Silikon-O-Ring (für 16307)

17147 PTFE-Ring mit PTFE-beschichtetem

Stützsieb und Lochblech sowie

Silikon-O-Ring (für 16316)

16307

16316

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1. Specifications

2. Equipment Supplied

3. Cleaning and Care of the Filter Holder

4. How to Assemble the Filter Holder

5. Clarifying Filtration

6. Sterile Filtration

7. Microbiological Testing

8. Analytical Methods

9. Recommended Accessories

10. Spare Parts

Glass vacuum filter holders are available in two types

which differ only in the filter support, which is a PTFE

ring. This ring contains either a glass frit or a PTFE-

coated stainless steel screen and an underdrain screen.

The filter supports may only be changed as a unit.

Because of the particularly even distribution of parti-

culates of the membrane filter surface, filter supports

with glass frits are preferred for use in particulate

analysis.

Filter supports with a PTFE-coated screen are mainly

used for clarifying or sterile filtration of liter volumes.

Table of Contents

14 |

Materials: Borosilicate glass (3.3 DIN-ISO 3585)

Clamp: Anodized aluminum

Filter support: a) Sintered glass frit in a PTFE ring,

with a centering rim on top and silicone O-ring on

the bottom, or b) PTFE-coated stainless steel screen on

an underdrain screen in a PTFE ring, with a centering

rim on top and a silicone O-ring on the bottom.

Filter Holder No. 16306* 16307*

16315** 16316**

Silicone O-ring 25 + 3 mm 45 + 3 mm

Filter diameter 25 mm 50 mm

(or 24) (or 47)

Prefilter diameter 20 mm 40 mm

Filtration area 3 cm2 12.5 cm2

Capacity 30 ml 250 ml

Connections:

Outer diameter of outlet 12 mm 15 mm

Operating pressure vacuum only vacuum only

Sterilization: Autoclave up to 134°C maxi-

mum, or use dry heat up to

180°C maximum depending

on the membrane filter used.

** with a glass frit

** with a PTFE-coated stainless steel screen

1. Specifications

| 15

Remove the filter holder from the packaging and check

the list below to make sure you have all the necessary

parts:

Equipment supplied Shown in

Fig.1 as:

1 Lid (16307 and 16316 only) No. 1

1 Glass funnel No. 2

1 Clamp No. 3

1 Filter support with glass frit or PTFE-

coated support screen and PTFE

underdrain screen No. 4

1 Silicone O-ring No. 5

1 Glass base No. 6

2. Equipment supplied

Fig.1

16 |

To ensure long service life and proper functioning of

the filter holder, it must be cleaned before the first use

and after every filtration run.

Proceed as follows:

3.1 Completely disassemble the filter holder

as indicated in the list of parts (see Fig.1).

3.2 Use a soft brush, warm water, and a gentle, commer-

cially available laboratory detergent (for metal, glass

and plastics) to clean all parts.

3.3 Rinse all parts first with hot water, then with distilled

water.

3.4 Dry the parts with compressed air, or let them dripdry.

Do not use towels or cloth as they may leave lint on

the filter holder.

4. How to Assemble the Filter Holder and

Insert the Membrane Filter

To assemble the vacuum filtration system, you will

need in addition:

– 1 Stopper (see “Recommended Accessories”)

– 1 Suction flask (16672)

– 1 Vacuum source (e.g., 16612 or 16615)

– Vacuum hose (16623)

– 1 Woulff’s bottle (16610) or 1 Vacusart (17804-M)

– Pair of forceps for handling the membrane filter

(see Fig. 2).

For large numbers of routine tests, we recommend our

3-place or 6-place vacuum manifold along with the

corresponding number of filter holders and connectors.

(See “Recommended Accessories.”)

3. Cleaning and Care of the Filter Holder

| 17

4.1 Place the appropriate stopper on the glass base and

insert it into the suction flask (see Fig. 3).

4.2 Using a vacuum hose, connect the suction flask and

vacuum source, such as a water jet pump (see Fig. 4).

If an electric pump is used as a vacuum source,

a Woulff’s bottle (see Fig. 5) or a Vacusart (17804-M)

must be connected between the suction flask and

the pump in order to prevent the filtrate from foa-

ming over and entering the pump. When installing the

Vacusart (17804-M) , be sure that any filtrate overflow

can return to the suction flask, and will not be

entrapped in the hose.

4.3 Press-fit the silicone O-ring on the underside of the

filter support and place the glass frit or support screen

and underdrain screen on top. To do so, place the

underdrain screen with the smooth side up in the filter

support and press on the PTFE-coated support screen

with the outside edge facing down so that it fits exactly

into the indentation.Then put the filter support on the

glass base (see Fig. 6).

4.4 Using forceps, remove the membrane filter from the

packaging and center it on the filter support.

If you need to use a prefilter, center it on the membra-

ne filter at this point. The diameter of the prefilter may

not exceed the dimensions listed in the “Specifications”

(see Fig. 7).

4.5 Set the glass funnel on top of the base so that it fits

exactly and clamp the two parts together (see Fig. 8).

18 |

5.1 Assemble the filter holder and insert the membrane

filter as described in section 4.

5.2 Pour the liquid to be filtered into the glass

funnel (see Fig. 9) and switch on the vacuum pump.

Important Note:

If you are additionally using a prefilter, switch the va-

cuum pump on before filling the funnel with the liquid

to be filtered. (Otherwise, the prefilter may float to the

top of the liquid.)

5.3 Filtration is completed when all the liquid has passed

through the membrane filter. Disconnect the vacuum

source from the filter holder by pulling the hose off

the hose nipple on the suction flask (if the water jet

pump is used; see Fig.10). If a Woulff’s bottle and a

vacuum pump have been used, switch off the pump

and release vacuum via the Woulff’s bottle (see Fig.11).

5.4 Now remove the filter holder and stopper from the

suction flask and transfer the filtrate to another con-

tainer or leave it in the suction flask.

6. Sterile Filtration

(This is possible only with the filter support and

PTFE-coated screen, and not the glass filter support.)

6.1 Assemble the filter holder and insert the mem brane

filter as described in section 4; however, do not con-

nect the filter holder to a vacuum source or a Woulff’s

bottle.

5. Clarifying Filtration

| 19

Important Note:

Wet cellulose nitrate filters before placing them in wet

filter holders. If the filter holder is dry, cellulose nitrate

filter must also be dry. Always make it a point to wet

cellulose acetate filters and nylon filters (Sartolon)

before placing them in a filter holder.

6.2 Use a short length of vacuum tubing to attach

a Vacusart (17804-M) to the nipple of the suction

bottle (see Fig.12).

6.3 Close the glass funnel with either the silicone

lid and a piece of cotton or with aluminum foil

(see Fig.13).

6.4 Autoclave the filter holder at 121°C and 1 bar

(14.5 psi) for 30 minutes. (This may be done with all

Sartorius Stedim Biotech membrane filters except for

gelatin and polyamide filters.)

Cellulose nitrate membrane filters (111..) and PTFE

membrane filters (118..) as well as glass fiber filters

(134..) may be sterilized by dry heat for either 2 hours

at 180°C or for 3 hours at 160°C.

(Do not wet the filters before placing them

in filter holders.)

6.5 After sterilizing the assembled filtration unit, proceed

with the filtration run as with clarifying filtration.

Be sure to maintain sterile conditions.

7. Microbiological Testing

For microbiological testing, it is necessary to sterilize

the filter holder containing the membrane filter.

Either autoclave the filter at 121°C for 30 min., or use

dry heat at 180°C for 2 hours. After sterilizing, perform

the filtration run, then remove the membrane filter and

incubate it on the required culture medium|media.

8. Analytical Methods

Sartorius Stedim Biotech Vacuum Filter Holders made

of glass are especially suited for analysis, e.g.,

gravimetric determinations, particulate analysis, etc.

20 |

Filter Holder No.

Product Name 16306* 16307*

16315** 16316**

Fluoroelastomer O-ring 00118 00124

Stopper 17174 17175

Stainless steel adapter

with stopper for

stainless steel 3-place

and 6-place manifold 16836 16837

Stainless steel

3-place manifold 16842 16842

Stainless steel

6-place manifold 16843 16843

Incubator 220 V, 50 Hz – 18113

** with glass frit filter support

** with PTFE-coated screen for the filter support

These additional accessories can be used

with all filter holders:

16672 Suction flask, 2 l

16623 Rubber vacuum hose, 1m

16611 Water jet pump with G 3/4”

female thread

16612 Laboratory vacuum pump,

220 V, 50 Hz

16615 Laboratory vacuum pump,

110 V, 60 Hz

16692 Vacuum pump, 220 V, 50 Hz

16695 Vacuum pump, 110 V, 60 Hz

17804-M Vacusart

16625 Stainless steel forceps

9. Recommended Accessories

| 21

16306, 16315:

6980115 Glass funnel, 30 ml

6980116 Glass base, 25 mm

6980117 Silicone O-ring, 25 + 3 mm

6983008 Clamp

17148 PTFE ring with glass frit and silicone

O-ring (for 16306)

17149 PTFE ring with PTFE-coated underdrain

screen and support screen including

a silicone O-ring (for 16315)

16306

16315

10. Spare parts (see diagram)

22 |

16307, 16316:

6980119 Glass funnel, 250 ml

6980120 Glass base, 50 mm

6980121 Silicone rubber lid

6980123 Silicone O-ring, 45 + 3 mm

6983006 Glass frit

6983007 PTFE-coated support screen

6983009 Clamp

6983010 Underdrain screen, PTFE-coated

17146 PTFE ring with glass frit and

silicone O-ring (for 16307)

17147 PTFE ring with PTFE-coated underdrain

screen and support screen including

a silicone O-ring (for 16316)

16307

16316

| 23

1. Caractéristiques techniques

2. Etendue de la livraison

3. Nettoyage et entretien de l’appareil de filtration

4. Assemblage de l’appareil de filtration

5. Filtration clarifiante

6. Filtration stérilisante

7. Analyses microbiologiques

8. Déterminations analytiques

9. Accessoires recommandés

10. Pièces de rechange

Les appareils de filtration sous vide en verre existent

toujours en deux versions. Elles se distinguent unique-

ment par le support filtre constitué d’un anneau en

PTFE qui contient soit une fritte de verre ou une tôle

perforée recouvert de PTFE avec grille support. Les

supports filtres ne peuvent être échangés que par unité

complète.

Les appareils à fritte de verre sont utilisés de préférence

pour l’analyse des résidus en raison de la répartition

particulièrement régulière des résidus sur la membrane

filtrante.

Les appareils à tôle perforée recouverts de PTFE sont

essentiellement utilisés pour la filtration clarifiante ou

stérilisante (volumes en litres).

Sommaire

24 |

Matériau : verre de borosilicate 3.3 (DIN-ISO 3585)

Pince : aluminium anodisé

Support filtre: a) verre fritté serti dans un

anneau en PTFE, avec bord de centrage en haut

et joint torique en silicone en bas ou b) tôle perforée

revêtue de PTFE sur une grille support dans un anneau

en PTFE, avec bord de centrage en haut et joint torique

en silicone en bas.

N° d’appareil 16306* 16307*

16315** 16316**

Joint torique 25 + 3 mm 45 + 3 mm

en silicone

Diamètre du filtre 25 mm 50 mm

(ou 24) (ou 47)

Diamètre du préfiltre 20 mm 40 mm

Surface filtrante 3 cm2 12,5 cm2

Capacité 30 ml 250 ml

Tubulure de sortie :

Diamètre extérieur 12 mm 15 mm

Pression de service uniquement uniquement

dépression dépression

Stérilisation Autoclavage jusqu’à 134°C, en

chaleur sèche jusqu’à 180°C

Les conditions à appliquer

sont fonction du filtre à

membrane utilisé.

** avec fritte de verre

** avec tôle perforée recouverts de PTFE

1. Caractéristiques techniques

| 25

Retirez l’appareil de l’emballage et vérifiez

si la livraison est complète en vous aidant de la liste

Etendue de la livraison en fig.1

1 couvercle

(uniquement 16307 et 16316) N° 1

1 entonnoir en verre N° 2

1 pince N° 3

1 support filtre à fritte de verre

ou grille support en PTFE et tôle

perforée recouverts de PTFE N° 4

1 joint torique en silicone N° 5

1 partie inférieure en verre N° 6

2. Etendue de la livraison

Fig.1

26 |

Afin d’assurer une longue durée de vie et le bon

fonctionnement de votre appareil, il est nécessaire de le

nettoyer avant la première et après chaque utilisation.

Procédez de la manière suivante :

3.1 Démontez l’appareil en pièces détachées (fig.1).

3.2 Nettoyez toutes les pièces à l’eau chaude avec les dé-

tergents habituels utilisés en laboratoires (pour métal,

verre, matière plastique) et une brosse souple.

3.3 Rincez les pièces à l’eau très chaude puis avec de l’eau

distillée.

3.4 Séchez les pièces à l’air comprimé ou à l’air. N’utilisez

pas de chiffons pour éviter les risques de rayures.

4. Assemblage de l’appareil de filtration et

mise en place de la membrane filtrante

Le montage d’un système de filtration sous vide néces-

site les éléments supplémentaires suivants :

– 1 bouchon (voir accessoires recommandés)

– 1 fiole à vide (16672)

– 1 source de vide (par ex. 16612)

– 1 tuyau à vide (16623)

– 1 flacon de Woulff (16610) ou

1 Vacusart (17804-M)

– 1 pincette pour la manipulation de la membrane

filtrante (fig. 2)

Si vous voulez effectuer de nombreuses analyses de

routine, nous vous recommandons notre rampe à vide

à 3 ou 6 postes avec le nombre correspondant

d’appareils de filtration et d’adaptateurs (voir acces-

soires recommandés).

3. Nettoyage et entretien de l’appareil

de filtration

| 27

4.1 Placez le bouchon correspondant sur la partie inféri-

eure en verre et fixez-la sur la fiole à vide (fig. 3).

4.2 Raccordez la fiole à vide et la source de vide (par ex.

une trompe à eau) à l’aide du tuyau à vide (fig. 4).

Si vous utilisez comme source de vide une pompe

électrique, il faut monter un flacon de Woulff (fig. 5)

ou un Vacusart (17804-M) entre la fiole à vide et la

pompe pour empêcher le débordement de mousse du

filtrat.

Si vous montez un Vacusart, veillez à ce que le filtrat

qui a débordé puisse revenir dans la fiole à vide et ne

demeure pas dans le tuyau.

4.3 Placez le joint torique en silicone sur la face inférieure

du support filtre et la fritte de verre ou la grille support

et la tôle perforée recouverts de PTFE sur la partie supé-

rieure. Introduisez d’abord la grille support avec la face

lisse dirigée vers le haut et enfoncez la tôle perforée

recouverts de PTFE (le bord extérieur dirigé vers le bas)

exactement dans l’évidement prévu à cet effet.

Posez ensuite le support filtre sur la partie inférieure en

verre (fig. 6).

4.4 Retirez la membrane filtrante de l’emballage

à l’aide d’une pincette et centrez-la sur le support

filtre. Si vous utilisez un préfiltre, centrez-le ensuite sur

la membrane filtrante. Le diamètre du préfiltre ne doit

pas excéder les dimensions indiquées en «1. Caractéri-

stiques techniques» (fig. 7).

4.5 Posez l’entonnoir en verre exactement sur la partie

inférieure et fermez les deux parties à l’aide

de la pince de serrage (fig. 8).

28 |

5.1 Assemblez l’appareil de filtration et mettez

la membrane filtrante en place comme décrit en 4.

5.2 Versez le liquide à filtrer dans l’entonnoir en verre

(fig. 9) et mettez la pompe à vide en marche.

Remarque :

Si vous utilisez en plus un préfiltre pour la filtration,

nous vous recommandons de mettre d’abord la pompe

à vide en marche et de verser ensuite le liquide à filtrer

dans l’entonnoir en verre (le préfiltre pourrait sinon

remonter).

5.3 La filtration est achevée lorsqu’il ne reste plus

de liquide sur la membrane filtrante. Coupez le vide

de l’appareil en retirant simplement, sur la trompe à

eau, le tuyau de l’olive de la fiole à vide (fig.10).

Si vous vous servez d’un flacon de Woulff et d’une

pompe à vide, arrêtez la pompe à vide et détendez le

flacon de Woulff (fig.11).

5.4 Vous pouvez alors retirer l’appareil de filtration et son

bouchon de la fiole à vide et transvaser le filtrat ou le

laisser directement dans la fiole à vide.

6. Filtration stérilisante

(possible uniquement avec la tôle perforée recouverts

de PTFE comme support filtre, mais non avec une

fritte de verre)

6.1 Assemblez l’appareil de filtration et mettez la memb-

rane filtrante en place comme décrit en 4, mais sans

raccordement à une source de vide ou à un flacon

de Woulff.

5. Filtration clarifiante

| 29

Les filtres en nylon (Sartolon) doivent toujours

être montés humides.

6.2 Montez un Vacusart (17804-M) sur l’olive de la fiole

à vide à l’aide d’un tuyau à vide court (fig.12).

6.3 Fermez l’entonnoir en verre avec le couvercle

en silicone et du coton ou avec un film en aluminium

(fig.13).

6.4 Stérilisez l’appareil en autoclave pendant

30 minutes à 121°C et 1 bar (cette opération est

réalisable avec toutes les membranes filtrantes Sartorius

Stedim Biotech, à l’exception des filtres en gélatine et

en polyamide). Les membranes filtrantes en acétate de

cellulose, réf. 111.. et en PTFE, réf. 118.. (également

les filtres en fibre de verre réf. 134..) peuvent être

stérilisées alternativement dans l’appareil de filtration à

la chaleur sèche de 180°C pendant plus de 2 heures ou

de 160°C pendant plus de 3 heures (montez le filtre à

l’état sec).

6.5 Après la stérilisation de l’unité de filtration, effectuez

la filtration stérilisante comme une filtration clarifiante.

Respectez les conditions stériles.

7. Analyses microbiologiques

L’analyse microbiologique exige de stériliser l’appareil

de filtration avec le filtre monté (en autoclave pendant

30 minutes à 121°C, ou à la chaleur sèche de 180°C

pendant 2 heures). Effectuez ensuite la filtration,

prélevez la membrane filtrante et incubez-le sur les

milieux de culture correspondants.

8. Déterminations analytiques

Les appareils de filtration en verre équipés de membra-

nes filtrantes conviennent parfaitement par exemple

pour les déterminations gravimétriques,

les tests de particules etc.

30 |

N° de l’appareil de filtration

Désignation 16306* 16307*

de l’article 16315** 16316**

Joint torique en

fluoroélastomère 00118 00124

Bouchon 17174 17175

Adaptateur en acier

inoxydable avec

bouchon pour rampe

en acier inoxydable

à 3 et 6 postes 16836 16837

Rampe en acier

inoxydable à 3 postes 16842 16842

Rampe en acier

inoxydable à 6 postes 16843 16843

Etuve d’incubation

220 V, 50 Hz – 18113

** avec fritte de verre comme support filtre

** avec tôle perforée recouverts de PTFE comme

support filtre

Les autres accessoires sont identiques pour tous

les appareils:

16672 Fiole à vide, 2 litres

16623 Tuyau à vide en caoutchouc, 1 mètre

16611 Trompe à eau, filetage femelle 3/4”

16612 Pompe à vide de laboratoire, 220 V, 50 Hz

16692 Pompe à vide, 220 V, 50 Hz

16610 Flacon de Woulff

17804-M Vacusart

16625 Pince Brucelles en acier inoxydable

9. Accessoires recommandés

| 31

16306, 16315 :

6980115 Entonnoir en verre, 30 ml

6980116 Partie inférieure en verre, 25 mm

6980117 Joint torique en silicone, 25 + 3 mm

6983008 Pince de serrage

17148 Anneau en PTFE avec fritte de verre et

joint torique en silicone (pour 16306)

17149 Anneau en PTFE avec grille support et

tôle perforée revêtues de PTFE ainsi que

joint torique en silicone (pour 16315)

16306

16315

10. Pièces de rechange (voir croquis)

32 |

16307, 16316:

6980119 Entonnoir en verre, 250 ml

6980120 Partie inférieure en verre, 50 mm

6980121 Couvercle en caoutchouc de silicone

6980123 Joint torique en silicone, 45 + 3 mm

6983006 Fritte de verre

6983007 Tôle perforée recouverts de PTFE

6983009 Pince de serrage

6983010 Grille support recouverts de PTFE

17146 Anneau en PTFE avec fritte de verre et joint

torique en silicone (pour 16307)

17147 Anneau en PTFE avec grille support et tôle

perforée revêtues de PTFE ainsi que joint

torique en silicone (pour 16316)

16307

16316

| 33

1. Datos técnicos

2. Equipo suministrado

3. Limpieza y mantenimiento del aparato de filtración

4. Montaje del aparato de filtración

5. Filtración clara

6. Filtración estéril

7. Análisis microbiológicos

8. Determinaciones analíticas

9. Accesorios recomendables

10. Repuestos

Los aparatos de filtración al vacío de vidrio se

encuentran disponibles en dos diseños diferentes.

Estos modelos se diferencian solamente por los

soportes del filtro, los cuales están compuestos de

un anillo de PTFE, el cual puede contener o una frita

de vidrio o una chapa perforada de acero inoxidable

revestidos con PTFE con un tamiz de soporte.

Los soportes del filtro se pueden cambiar solamente

como unidad completa.

Los aparatos con frita de vidrio se utilizan primordial-

mente para los análisis residuales, debido a la repartici-

ón muy simétrica de los residuos sobre la superficie

del filtro de membrana.

Los aparatos con chapa perforada de acero inoxidable

revestida con PTFE se emplean principal mente para las

filtraciones clara o estéril (de 1 litro de volumen).

Contenido

34 |

Material: Vidrio de borosilicato 3.3 (DIN-ISO 3585)

Abrazadera: Aluminio anodizado

Soporte del filtro: a) Frita de vidrio sinterizado

en un anillo de PTFE, con borde de centraje en la parte

superior y anillo O de silicona en la parte inferior,

o bien

b) Chapa perforada de acero inoxidable revestida con

PTFE sobre un tamiz de soporte en un anillo de PTFE,

con borde de centraje en la parte superior y anillo

O de silicona en la parte inferior.

Aparato N°. 16306* 16307*

16315** 16316**

Anillo O de silicona 25 + 3 mm 45 + 3 mm

Diámetro del filtro 25 mm 50 mm

(ó 24) (ó 47)

Diámetro del prefiltro 20 mm 40 mm

Area de filtración 3 cm2 12,5 cm2

Capacidad 30 ml 250 ml

Conexiones:

Diámetro exterior

de la salida 12 mm 15 mm

Presión de trabajo sólo vacío sólo vacío

Esterilización Autoclave hasta 134°C,

aire caliente hasta 180°C.

Las condiciones a reali zarse

dependen del filtro de mem-

brana empleado.

** con frita de vidrio

** con chapa perforada de acero inoxidable

revestida con PTFE

1. Datos técnicos

| 35

Desempaque el aparato y compruebe si el equipo sumi-

nistrado está completo, con ayuda de la siguiente lista:

Equipo suministrado En la figura 1

1 tapa (sólo para 16307 y 16316) N° 1

1 embudo de vidrio N° 2

1 abrazadera N° 3

1 soporte del filtro con frita de vidrio,

o bien, tamiz de soporte con PTFE

y chapa perforada de acero

inoxidable con PTFE N° 4

1 anillo O de silicón N° 5

1 base de vidrio N° 6

2. Equipo suministrado

Fig.1

36 |

Para garantizar que su aparato le dure mucho tiempo

en perfecto estado de funcionamiento, es necesario

limpiar el aparato antes de utilizarlo por primera vez y

después de cada uso.

Para realizar la limpieza, proceda de la siguiente

manera:

3.1 Desmonte el aparato completamente (fig.1).

3.2 Lave todas las partes con agua caliente, haciendo uso

de un cepillo de cerdas suaves y un detergente comer-

cial para laboratorio (para metales, vidrio, plástico).

3.3 Lave primero todas las partes con agua caliente

y después con agua destilada.

3.4 Seque todas las partes con aire comprimido

o póngalas a secar al aire. No utilice paños para secar,

ya que estos pueden dejar fibras en el aparato.

4. Montaje del aparato y colocación del

filtro de membrana

Para el montaje de un sistema de filtración al vacío,

Ud. necesita además:

– 1 tapón (vea los accesorios recomendados)

– 1 frasco de succión (16672)

– 1 fuente de vacío (p. ej., 16612)

– 1 manguera para vacío (16623)

– 1 frasco de Woulff (16610), o bien,

– 1 Vacusart (17804-M)

– 1 pinza para el manejo de los filtros de membrana

(fig. 2)

Si Ud. desea realizar una gran cantidad de análisis

rutinarios, recomendamos nuestro dispositivo de succi-

ón de 3 ó de 6 plazas con la cantidad correspondiente

de aparatos de filtración y piezas de conexión (vea los

accesorios recomendados).

3. Limpieza y cuidado del aparato

de filtración

| 37

4.1 Coloque a la base de vidrio su tapón corres pondiente

e instale esta base sobre el frasco de succión (fig. 3)

4.2 Con ayuda de la manguera para vacío realice la cone-

xión entre el frasco de succión y la fuente de vacío (p.

ej., una trompa de agua) (fig. 4).

Si se utiliza una bomba eléctrica como fuente de vacío,

tiene que conectarse un frasco de Woullf (fig. 5) entre

el frasco de succión y la bomba, como medida de

protección contra derrames de la solución a filtrar,

o debe utilizarse el Vacusart (17804-M).

Al instalar el Vacusart, ponga atención en que el

filtrado derramado regrese al frasco de succión y no se

quede en la manguera.

4.3 Coloque sobre la parte inferior del soporte del filtro

un anillo O de silicona y sobre la parte superior,

coloque la frita de vidrio, o bien, el tamiz de soporte y

la chapa perforada de acero inoxidable revestidos con

PTFE.

Coloque primero el tamiz de soporte con la parte lisa

hacia arriba y oprima la chapa perforada de acero ino-

xidable con PTFE (el borde exterior debe quedar hacia

arriba), haciéndola encajar exactamente en la abertura

dispuesta para este fin.

A continuación, coloque el soporte del filtro sobre

la base de vidrio (fig. 6).

4.4 Utilizando una pinza, saque el filtro de membrana

de su empaque y colóquelo en el centro del soporte

del filtro.

Si Ud. utiliza un prefiltro, coloque después éste sobre

el centro del filtro de membrana.

El diámetro del prefiltro no debe sobrepasar las medi-

das que se indican en «1. Datos técnicos». (fig. 7).

4.5 Coloque el embudo de vidrio sobre la base y cierre

ambas partes con la abrazadera (fig. 8).

38 |

5. Monte el aparato de filtración y coloque el filtro

de membrana, como se describe bajo el punto 4.

5.2 Llene el embudo de vidrio con el líquido a filtrar

(fig. 9) y encienda la bomba de vacío.

Nota importante:

Si Ud. emplea además un prefiltro para realizar la fil-

tración, recomendamos encender primero la bomba

de vacío y después echar el líquido a filtrar en el

embudo de vidrio (de no hacerse así, el prefiltro podría

flotar hacia arriba).

5.3 La filtración ha terminado cuando ya no hay líquido

sobre el filtro de membrana. Quite el vacío del aparato

sacando simplemente la manguera del niple del frasco

de succión, si utilliza una bomba de chorro de agua

(fig.10).

Si Ud. utiliza el frasco de Woulff y la bomba de vacío,

apague la bomba y haga la distensión del sistema por

medio del frasco de Woulff (fig.11).

5.4 Ahora Ud. puede retirar el aparato de filtración con

tapón colocado del frasco de succión y puede transfe-

rir el filtrado a otro recipiente o éste puede quedarse

directamente en el frasco de succión.

6. Filtración estéril

(sólo con la chapa perforada de acero inoxidable reve-

stida con PTFE como soporte del filtro y no con la frita

de vidrio).

6.1 Monte el aparato y coloque el filtro de membrana

como se describe bajo el punto 4, pero sin conectar la

fuente de vacío o la botella de Woulff.

5. Filtración clara

| 39

Los filtros de nylon (Sartolon) tienen que humedecerse

antes de colocarse.

6.2 Coloque un Vacusart (17804-M) en el niple

del frasco de succión con ayuda de una manguera de

vacío corta (fig.12).

6.3 Cierre el embudo de vidrio con la tapa

de silicón y algodón o con una lámina de aluminio

(fig.13).

6.4 Autoclave el aparato de filtración a 121°C y 1 bar

durante 30 minutos (esto puede realizarse con todos

los filtros de membrana de Sartorius Stedim Biotech,

a excepción de los filtros de gelatina y los filtros de

membrana de poliamida).

Los filtros de membrana de acetato de celulosa, N° de

pedido 111... y de PTFE, N° 118.. (así mismo los filtros

de fibra de vidrio, N° 134..) pueden ser esterilizados

en forma alternativa en el aparato de filtración con

calor seco a 180°C durante 2 horas o a 160°C durante

3 horas (los filtros tienen que colocarse cuando están

secos).

6.5 Después de la esterilización de la unidad de filtración

lleve a cabo la filtración estéril de igual manera cómo

se realiza una filtración clara.

Aténgase a las indicaciones acerca de la esterilidad.

7. Análisis microbiológicos

Para los análisis microbiológicos es necesario esterilizar

el aparato de filtración con el filtro colocado (autoclave

a 121°C durante 30 minutos o en calor seco a 180°C

durante 2 horas). A continuación, realice la filtración,

retire el filtro de membrana e incúbelo en medios

de cultivo apropiados.

8. Determinaciones analíticas

Los aparatos de filtración de vidrio utilizados con

filtros de membrana son muy apropiados para las

determinaciones gravimétricas, pruebas de

partículas, etc.

40 |

N° de aparato de filtración

Denominación del 16306* 16307*

artículo 16315** 16316**

Anillo O de

fluoroelastómeros 00118 00124

Tapones 17174 17175

Adaptador de acero inoxi-

dable con tapón para

colocación sobre los

mecanismos de succión

con 3 y 6 plazas 16836 16837

Mecanismo de succión

de acero inoxidable

con 3 plazas 16842 16842

Mecanismo de succión

de acero inoxidable

con 6 plazas 16843 16843

Incubadora,

220 V, 50 Hz – 18113

** con frita de vidrio como soporte del filtro

** con chapa perforada de acero inoxidable revestida

con PTFE como soporte del filtro

Los accesorios siguientes se pueden utilizar con todos

los aparatos de filtración:

16672 Frasco de succión de 2 litros.

16623 Manguera de goma para vacío de 1 m.

16611 Trompa de agua con rosca hembra de 3/4”.

16612 Bomba de vacío para laboratorio,

220 V, 50 Hz.

16692 Bomba de vacío, 220 V, 50 Hz

16610 Frasco de Woulff

17804-M Vacusart

16625 Pinzas de acero inoxidable

9. Accesorios recomendables

| 41

16306, 16315:

6980115 Embudo de vidrio de 30 ml

6980116 Base de vidrio de 25 mm

6980117 Anillo O de silicona de 25 + 3 mm

6983008 Abrazadera

17148 Anillo de PTFE con frita de vidrio y anillo

O de silicona (para 16306)

17149 Anillo de PTFE con tamiz de soporte y

chapa perforada de acero inoxidable

revestidos de PTFE, incluyendo un anillo

O de silicona (para 16315)

16306

16315

10. Repuestos

(vea la ilustración)

42 |

16307, 16316:

6980119 Embudo de vidrio de 250 ml.

6980120 Base de vidrio de 50 mm.

6980121 Tapa de caucho de silicona.

6980123 Anillo O de silicona, 45 + 3 mm

6983006 Frita de vidrio

6983007 Chapa perforada de acero inoxidable

revestida con PTFE

6983009 Abrazadera

6983010 Tamiz de soporte, con recubrimiento

de PTFE

17146 Anillo de PTFE con frita de vidrio y anillo

O de silicona (sólo para 16307)

17147 Anillo de PTFE con tamiz de soporte

y chapa perforada de acero inoxidable

revestidos con PTFE, incluyendo un anillo

O de silicona (sólo para 16316)

16307

16316

| 43

1. Specifiche

2. Equipaggiamento fornito

3. Pulizia e manutenzione del portafiltro

4. Assemblaggio del portafiltro

5. Filtrazione chiarificante

6. Filtrazione sterilizzante

7. Analisi microbiologiche

8. Determinazioni analitiche

9. Accessori raccomandati

10. Parti di ricambio

I dispositivi in vetro per la filtrazione sotto vuoto

sono disponibili in due tipi. Differiscono solamente

per il tipo di supporto della membrana, costituito da

un anello in PTFE contenente un supporto di vetro

sinterizzato oppure un disco forato in acciaio inox

rivestito di PTFE ed un disco di drenaggio. I supporti

della membrana possono essere cambiati solo

come unità.

I dispositivi con il supporto in vetro sinterizzato

sono da preferire per l’analisi dei residui data la spe-

ciale distribuzione uniforme dei residui, sulla superficie

filtrante. I dispositivi con il supporto con disco forato

rivestito in PTFE sono invece usati per la filtrazione

sterilizzante e chiarificante di piccoli volumi di liquidi.

Indice

44 |

Materiali: Vetro borosilicato (3.3 DIN-ISO 3585)

Pinza: Alluminio anodizzato

Supporto della membrana: a) Anello in PTFE con un

supporto in vetro sinterizzato con all’estremità superi-

ore un bordo rialzato per centrare e all’estremità infe-

riore un O-ring in silicone oppure b) un anello in PTFE

con disco forato in acciaio inox rivestito in PTFE e un

disco di drenaggio. L’anello ha all’estremità superiore

un bordo rialzato per centrare e all’estremità inferiore

un O-ring in silicone.

N° dell’apparecchio 16306* 16307*

16315** 16316**

O-ring in silicone 25 + 3 mm 45 + 3 mm

Diametro della 25 mm 50 mm

membrana (o 24) (o 47)

Diametro del prefiltro 20 mm 40 mm

Superficie filtrante 3 cm2 12,5 cm2

Capacità del recipiente 30 ml 250 ml

Attacco in uscita:

diametro esterno 12 mm 15 mm

Massima solo sotto solo sotto

pressione vuoto vuoto

Sterilizzazione In autoclave fino a 134°C,

calore secco fino a 180°C.

Le condizioni per la steriliz-

zazione dipendono dal tipo di

membrana usata.

** con supporto in vetro sinterizzato

** con un disco forato rivestito in PTFE

1. Specifiche

| 45

Togliete l’apparecchio dalla confezione e controllate

con l’aiuto della seguente lista se tutte le parti sono

state fornite:

Equipaggiamento fornito Foto nr.

1 Coperchio (solo 16307 e 16316) Nr. 1

1 Recipiente superiore Nr. 2

1 Pinza Nr. 3

1 Supporto della membrana con supporto

in vetro sinterizzato o disco di supporto

rivestito in PTFE e disco di drenaggio

in PTFE Nr. 4

1 O-ring in silicone Nr. 5

1 Base in vetro Nr. 6

2. Equipaggiamento fornito

Fig.1

46 |

Per garantire una lunga durata ed efficienza del

portafiltro, è necessario pulirlo prima dell’uso iniziale

e dopo ogni filtrazione.

Procedete nel modo seguente:

3.1 Smontate il portafiltro nelle sue parti singole

(vedi fig.1).

3.2 Con l’aiuto di una spazzola morbida, pulite tutte le

parti con acqua calda e con un detergente di labo-

ratorio disponibile in commercio (per metalli, vetro,

plastica).

3.2 Sciacquate tutte le parti prima con acqua calda e poi

con acqua distillata.

3.4 Asciugate le parti con aria compressa oppure lasciate

che si asciughino da sè. Non usate panni

o canovacci, potrebbero lasciare dei residui di fibra sul

portafiltro.

4. Assemblaggio del portafiltro

e posizionamento della membrana fil-

trante

Per l’assemblaggio del sistema per filtrazione sotto vu-

oto, sono necessari i seguenti accessori supplementari:

– 1 Tappo (vedi «Accessori raccomandati»)

– 1 Beuta da vuoto (16672)

– 1 Fonte di vuoto (ad es., 16612)

– 1 Tubo da vuoto (16623)

– 1 Bottiglia di Woulff (16610) o

– 1 Vacusart (17804-M)

– 1 Pinzetta per il posizionamento della membrana

filtrante (Fig.2)

Nel caso si debbano eseguire numerosi test di routine,

Vi consigliamo l’uso dei nostri collettori a 3 o a 6 posti

con il numero corrispondente dei portafiltri e attacchi.

(vedi «Accessori raccomandati»).

3. Pulizia e manutenzione

dell’apparecchio per filtrazione

| 47

4.1 Mettete il tappo appropriato sulla base di vetro ed

inseritela nella beuta da vuoto. (Fig. 3).

4.2 Usando un tubo da vuoto, collegate la beuta alla fonte

di vuoto (ad es. una pompa da vuoto ad acqua) (fig. 4).

Se usate una pompa elettrica come fonte di vuoto, do-

vete connettere una bottiglia di Woulff o un Vacusart

tra la beuta e la pompa, in modo da prevenire che del

filtrato trabocchi ed entri nella pompa (fig. 5).

Quando si monta il Vacusart bisogna fare attenzione

che il filtrato traboccato possa ritornare nella beuta

e non rimanga nel tubo.

4.3 Ponete l’O-ring in silicone sulla parte sotto del sup-

porto della membrana e sulla parte sopra il supporto

in vetro sinterizzato, il disco di drenaggio e il disco di

supporto rivestito in PTFE. Per far ciò, mettete il disco

di drenaggio con la parte liscia rivolta verso l’alto e

premete il disco di supporto rivestito in PTFE con il

bordo esterno verso il basso in modo che entri esat-

tamente nella dentellatura. Poi ponete il supporto del

filtro sulla base in vetro (Fig. 6).

4.4 Con l’aiuto di una pinzetta, togliete il filtro a

membrana dalla confezione e lo centrate sul supporto

del filtro.

Se, per una particolare procedura di filtrazione è

richiesto il prefiltro, lo centrate semplicemente sopra

il filtro a membrana. Il diametro del prefiltro non deve

superare le dimensioni riportate nel paragrafo

«Specifiche» (Fig. 7).

4.5 Mettete il recipiente superiore sopra la base assembla-

ta con il supporto del filtro in modo che combacino

esattamente e assicurate entrambe le parti bloccandole

con la pinza.

48 |

5.1 Assemblate il portafiltro e posizionate il filtro

a membrana come descritto nel punto 4.

5.2 Versate il liquido da filtrare nel recipiente

superiore (fig. 9) e accendete la pompa da vuoto.

Nota importante:

Se usate per la filtrazione anche un prefiltro,

Vi consigliamo di accendere prima la pompa da vuoto

e poi versare il liquido da filtrare nel recipiente supe-

riore (altrimenti il prefiltro potrebbe galleggiare verso

l’alto).

5.3 La filtrazione è conclusa quando tutto il liquido è pas-

sato attraverso il filtro a membrana. A questo punto,

staccate la fonte di vuoto dall’apparecchio.

Se usate una pompa da vuoto ad acqua, staccate sem-

plicemente il tubo dall’attacco della beuta

da vuoto (Fig.10).

Se lavorate con la bottiglia di Woulff e la pompa da

vuoto, spegnete la pompa e riducete la pressione nella

bottiglia di Woulff (Fig.11).

5.4 A questo punto, il porta filtro con il tappo può essere

tolto dalla beuta da vuoto; il filtrato può essere trasfe-

rito o lasciato direttamente nella beuta di aspirazione.

6. Filtrazione sterilizzante

(solo con il supporto del filtro e con il disco rivestito in

PTFE, senza il supporto in vetro sinterizzato)

6.1 Per assemblare il portafiltro e inserire il filtro

a membrana seguite le istruzioni descritte al punto 4;

comunque non collegate il portafiltro ad una fonte

di vuoto o ad una bottiglia di Woulff.

5. Filtrazione chiarificante

| 49

Avvertenza:

Bagnate i filtri in nitrato di cellulosa prima di metterli

sui portafiltri bagnati. Se il portafiltro è secco, anche

i filtri in nitrato di cellulosa devono essere secchi.

E’ importante bagnare sempre i filtri in acetato di cel-

lulosa e i filtri in nylon (Sartolon) prima di metterli sul

portafiltro.

6.2 Usate un tubo da vuoto corto per unire un Vacusart

(17804-M) all’attacco della beuta da vuoto (Fig.12).

6.3 Chiudete il recipiente con un coperchio in silicone e

cotone o con un foglio d’alluminio (Fig.13).

6.4 Autoclavate l’apparecchio a 121°C e a 1 bar per

30 minuti. (Tutti i filtri a membrana Sartorius Stedim

Biotech possono essere sterilizzati in autoclave ad

eccezione dei filtri in gelatina in poliammide).

Per i filtri a membrana in acetato di cellulosa (111...),

in PTFE (118...) e i filtri in fibra di vetro (134...), come

procedura alternativa di sterilizzazione, si può usare

il calore a secco a 160°C per 3 ore o a 180°C per 2 ore.

(Non bagnare i filtri prima di metterli sui portafiltri).

6.5 Dopo aver sterilizzato l’unità del portafiltro,

procedete con l’operazione di sterilizzazione secondo

le indicazioni date per la sterilizzazione chiarificante.

Rispettate le consuete precauzioni per evitare la conta-

minazione.

7. Analisi microbiologiche

Per l’analisi microbiologica, è necessario sterilizzare

il portafiltro contenente il filtro a membrana (autocla-

vare a 121°C per 30 minuti oppure usare il calore secco

a 180°C per 2 ore). Dopo la sterilizzazione, procedete

con l’operazione di filtrazione, poi rimuovete il filtro

a membrana e lo incubate nel medium nutriente richie-

sto.

8. Determinazioni analitiche

I portafiltri sotto vuoto Sartorius Stedim Biotech sono

particolarmente indicati per effettuare determinazioni

analitiche, per es. determinazioni gravimetriche, analisi

delle particelle, ecc.

50 |

N° dell’apparecchio

di filtrazione

Designazione 16306* 16307*

16315** 16316**

O-ring in elastomero

fluorurato 00118 00124

Tappi in gomma 17174 17175

Adattatore in acciaio

inox con tappi per

collettore in acciaio

inox a 3 e 6 posti 16836 16837

Collettore in acciaio

inox a 3 posti 16842 16842

Collettore in acciaio

inox a 6 posti 16843 16843

Stufa incubatrice,

220 V, 50 Hz – 18113

** con supporto del filtro in vetro sinterizzato

** con un disco forato rivestito in PTFE per il supporto

del filtro

Questi accessori supplementari possono essere usati

con tutti i portafiltri:

1. Pompe:

16672 Beuta da vuoto da 2 litri

16623 Tubo in gomma, 1 m

16611 Pompa da vuoto ad acqua con filetto fem-

mina 3/4”

16612 Pompa da vuoto da laboratorio,

220 V, 50 Hz

16692 Pompa da vuoto , 220 V, 50 Hz

16610 Bottiglia di Woulff

17804-M Vacusart

16625 Pinzetta in acciaio inox

9. Accessori raccomandati

| 51

16306, 16315:

6980115 Recipiente superiore, 30 ml

6980116 Base in vetro, 25 mm

6980117 O-ring in silicone, 25 + 3 mm

6983008 Pinza

17148 Anello in PTFE completo di supporto in

vetro sinterizzato e O-ring in silicone

17149 Anello in PTFE con disco forato e disco

di drenaggio rivestiti con PTFE e O-ring

in silicone (per 16316)

16306

16315

10. Parti di ricambio

(ved. schema):

52 |

16307, 16316:

6980119 Recipiente superiore, 250 ml

6980120 Base in vetro, 50 mm

6980121 Coperchio in gomma di silicone

6980123 O-ring in silicone, 45 + 3 mm

6983006 Supporto in vetro sinterizzato

6983007 Disco forato rivestito in PTFE

6983009 Pinza

6983010 Disco di drenaggio rivestito in PTFE

17146 Anello in PTFE completo di supporto in

vetro sinterizzato e O-ring in silicone

(16307)

17147 Anello in PTFE con disco forato e disco

di drenaggio rivestiti con PTFE e O-ring

in silicone (per 16316)

16307

16316

| 53

2 3

4 5

6 7

8 9

10 11

12 13

Sartorius Stedim Biotech GmbH

August-Spindler-Strasse 11

37079 Goettingen, Germany

www.sartorius-stedim.com

Biotech GmbH, Goettingen,

Germany.

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without notice.

Status:

May 2014,

Sartorius Stedim Biotech GmbH,

Goettingen, Germany

Printed in the EU on paper bleached

without chlorine. | W

Publication No.: SL-6001-p140509

Ver. 05|2014

Sartorius Stedim 16315 Directions For Use Manual

Marca: Sartorius Stedim

Modelo: 16315

Tipo: Directions For Use Manual

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